Д. К. Тулегенова, кандидат с х. наук, Г. Х. Шектыбаева

Таким образом, целенаправленное использование длинношерстных и среднедлинношерстных баранов в стаде способствовало повышению у потомства настрига шерсти в мытом виде на 0,4-0,5 кг и высоты штапеля на боку на 1,4-2,3 см. В целом подбор не оказал существенного влияния на показатели жира и пота у полученного потомства.

УДК 616.9:619:636.2

Восприимчивость животных к заболеванию зависит от многих факторов: пола, возраста, физиологических особенностей, кормления, содержания, популяционного иммунитета [1]. Важным фактором способствующим повышению резистентности к заболеваниям служит специфическая профилактика, позволяющая повысить эффективность противоэпизоотических мероприятий.

Для иммунопрофилактики бруцеллеза предложены различные вакцины из аттенуированных штаммов. Специфическая профилактика бруцеллеза в нашей стране берет начало с 1953 года, когда начали применять вакцину из шт.19, что позволило значительно снизить зараженность и сократить случаи абортов бруцеллезной этиологии. Однако ее антигенные свойства, выраженные в длительной агглютиногенности, требовали изыскания других слабоагглютиногенных вакцинных штаммов. С 1972 года для вакцинопрофилактики бруцеллеза стали использовать вакцину из штамма 82 [2, 3].

Противобруцеллезные вакцины имеют определенные схемы применения на различных половозрастных группах животных. При соблюдении наставлений по использованию вакцин, как показывает практика, возможно добиться положительных результатов. Подтверждением сказанному служит благополучие большинства регионов Республики Казахстан и стран ближнего зарубежья.

Целью наших исследований явилось проведение ретроспективного анализа влияния вакцинопрофилактики на эпизоотический процесс при бруцеллезе в Западно-Казахстанской области.

На основе изучения ежегодных отчетов областного ветеринарного отдела за период 1990-2005 гг., проведено сопоставление зависимости показателей иммунопрофилактики среди телок перед случкой, взрослых коров и превалентности при бруцеллезе. Результаты мониторинга представлены в следующей гистограмме.

Относительно низкие показатели охвата специфической профилактикой в период с 1997 по 2001 годы к возрастанию превалентности заболевания. С 2002 по 2005 годы наблюдается определенная стабилизация эпизоотической ситуации, что с одной стороны связано со снижением популяции животных и возросшими показателями охвата поголовья иммунопрофилактикой.

Таким образом, результаты исследований свидетельствуют, что в современных многоукладных формах хозяйствования и недостаточной ветеринарно-санитарной культуре на малых и средних животноводческих фермах, специфическая профилактика бруцеллеза будет оправданным противоэпизоотическим мероприятием, позволяющим управлять эпизоотическим процессом.
ЛИТЕРАТУРА

1. Сидорчук, А. А. Общая эпизоотология / А. А. Сидорчук, Е. С. Воронин, А. А. Глушков / М. : Колос. – 2004. – С. 51-52.

2. Шумилов, К. В. Изучение вакцинных штаммов B.abortus 104 M. B.melitensis Rev-1. B.abortus 82 на крупном рогатом скоте / К. В. Шумилов, А. В. Акулов // тр. ВИЭВ. – 1977. – Т. 45. – С. 29-36.

3. Иванов, Н. П. Бруцеллез животных и меры борьбы с ним / Н. П. Иванов / Алматы. 2007.– С. 306-378.

УДК 619:616.9
Роль своевременной диагностики бруцеллеза животных

в управлении эпизоотического процесса
З. С. Айтпаева, А. Н. Поскребышева, магистранты
Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана
Бруцеллез инфекциясының эпизоотикалық маңыздылығы жануарлар бруцеллезін иммунологиялық бақылау және эпизоотиялық қадағалау жүйесін ынталандыруды қажет етуде. Эпизоотияға қарсы шаралар жүйесінің ынталандырудың негізіне эпизоотологиялық процесстің бақылау принципі жатады, оның ішіне эпизоотологиялық мониторинг және ауыл шаруашылық жануарлары бруцеллезінің ерте анықтауы кіреді.
Эпизоотическая значимость бруцеллезной инфекции обусловливает необходимость оптимизации системы эпизоотического надзора и иммунологического контроля бруцеллеза животных. Основой оптимальных систем противоэпизоотических мероприятий является принцип контроля эпизоотического процесса, который включает эпизоотологический мониторинг и раннюю диагностику бруцеллеза сельскохозяйственных животных.
Epizootic value of brussel infection avenges the necessity of optimization of the system of epizootic supervision and immunologic control of brussel of animals. The basis of optimization system of againstepizootic arrangement is the principle of control of epizootic process which includes epizootic monitoring and the early diagnostic of agricultural animals’ brussel.
Бруцеллез – это высокоинфекционное заболевание опасное как для животных, так и для человека. Несмотря на столетнюю историю открытия возбудителей этой инфекции и, соответственно, столь же длительную историю объединения усилий ученых разных стран, направленных на разработку и совершенствование средств и методов борьбы с ним, бруцеллез все еще остается одной из главных проблем мировой медицинской и ветеринарной науки.

Программы по ликвидации бруцеллеза животных, разработанные во времена существования колхозов и совхозов, были весьма результативны в прошлом, а для управления эпизоотической ситуацией различной степени напряженности применялись достаточно эффективные в условиях плановой экономики и командно-административной системы организационно-хозяйственные и ветеринарно-санитарные мероприятия. Но изменения в структуре сельского хозяйства серьезно усложнили применение тех правил и механизмов интенсивного управления животноводством, которые были эффективны для крупных специализированных хозяйств.

В связи с этим применяемые ныне методы исследования и профилактики животных оказались слабо результативными. Бруцеллезный эпизоотический процесс в рамках сельских округов, районов, областей и республики в целом приобрел новые закономерности, которые довольно сложно поддаются расшифровке. Усугубление эпизоотической ситуации и затруднения в управлении ею будут продолжаться до тех пор, пока не произойдет кардинальный пересмотр понятий, принципов и подходов к диагностике и профилактике бруцеллеза, к мерам борьбы с этой инфекцией.

В создавшейся ситуации от ветеринарных специалистов требуется срочное внедрение новых методов диагностики и профилактики бруцеллеза животных.

В сфере диагностики, очевидно, что применяемые методы недостаточно информативны для мониторинга эпизоотического процесса, так как основной упор по экономическим соображениям сделан на серологические исследования, результат которых в основном указывает на серопозитивность животного по отношению к бруцеллезному антигену, а не на истинный иммунологический статус животного по бруцеллезу и возможное бруцеллоносительство. Известно, что серопозитивность является сильно варьирующим показателем в различные периоды от момента инфицирования животного возбудителем и в значительной мере зависит как от физиологического состояния, так и от врожденных особенностей иммунной системы каждого конкретного животного. Диагностические средства и методы необходимы не только для выявления больных животных в неблагополучных по бруцеллезу хозяйствах, но и для зон свободных от инфекции, где взамен РА, РСК дающих в ряде случаев неспецифические реакции на бруцеллез, и трудоемких дорогостоящих ИФА целесообразно внедрять более простые, эффективные способы диагностики бруцеллеза. Для исправления ситуации необходимо внедрять комплексные методы исследования с применением серологических, аллергологических методов диагностики с поправкой на иммунологический статус животного, а также методов, подтверждающих наличие возбудителя, а именно ускоренных бактериологических методов с использованием селективных питательных сред и методов ПЦР.

В последние годы возросла эпизоотическая значимость бруцеллезной инфекции, что обусловливает необходимость оптимизации системы эпизоотологического надзора и иммунологического контроля бруцеллеза у животных.

И в настоящее время не подлежит сомнению тот факт, что основой оптимальных систем противоэпизоотических мероприятий является принцип контроля эпизоотического процесса, который в свою очередь объединяет два основных понятия – эпизоотологический мониторинг и управление эпизоотическим процессом.

Эпизоотологический мониторинг при бруцеллезе осуществляется по комплексно-целевой программе, в которой определена цель, задачи, организационная структура, содержание и порядок реализации мониторинга. Такая программа включает три взаимосвязанные разделы (подсистем): информационно-аналитического, диагностического и управленческого.

В информационно-аналитическом разделе эпизоотологического мониторинга, в рамках которого на основе первичной ветеринарной документации нами учтены и зарегистрированы некоторые статистические показатели эпизоотического процесса.

Одним из значимых аспектов мониторинга является степень пораженности популяции животных бруцеллезом и территориальную распространенность заболевания в регионе [1].

Степень пораженности популяции животных выражается показателем превалентности, определяемой по формуле:
П = Σ бж / Σ вж,
где: П – превалентность;

Σ бж – число больных животных (в пункте, очаге, регионе) на данный момент времени;

Σ вж – число восприимчивых животных.

Этот показатель позволяет оценивать степень пораженности популяции и территориальную распространенность инфекционной патологии.

Таким образом, ситуация по бруцеллезу крупного и мелкого рогатого скота в Западно-Казахстанской области остается напряженной и представляет определенную опасность для населения. Полученные данные свидетельствуют о необходимости существенного повышения охвата диагностическими исследованиями на бруцеллез крупного и мелкого рогатого скота и усиления ветеринарного надзора за состоянием неблагополучных пунктов и перемещением животных как в регионе и, так и за его пределы.

УДК 636.29:619.611

Біздің еліміздің азық-түлік бағдарламасын жүзеге асыру кезінде тек мал шаруашылығы өнімдерінің шығынымен күресу шараларына ғана емес, осыған қоса жануарлар ауруының алдын алу мен емдеудің ғылыми негізделген әдістерін қолдануға, ветеринарлық ғылымның дамуына баса назар аударылып келеді.

Сонымен қатар жануарлардың түрлік, тұқымдық және жастық ерекшеліктеріне қарай проекциялық анатомиясын зерттеу саласының да маңызы артуда, бұл зерттеулердің нәтижесі бойынша хирургиялық аурулар кезінде емдеудің тиімді әдістерін қолдануға мүмкіндік береді.

Бірақ та оқу әдебиеттерінде, ауыл шаруашылық жануарларының морфологиясы мен анатомиясы туралы ғылыми монографияларда түйелер туралы мәліметтер берілмеген, ал беріле қалған жағдайда мүйізді ірі қара малына немесе жылқыға ұқсастырып сипаттаған.

Сондықтан еліміздің ғалымдары мен ветеринарлық дәрігерлерінің бактриан түйесінің, әсіресе, бас аумағының бет бөлімінің проекциялық анатомиясына деген қызығушылығының артуы түсінікті [1, 2, 3, 4].

Біздің зерттеу жұмысымыздың мақсаты бактриан түйесінің бас аумағының бет бөлімінің сілекей бездерінің проекциялық анатомиясын зерттеп, олардың морфометриясын өткізу болып табылды.

Сілекей бездерінің орналасу орны мен басқа да анатомиялық түзілімдерге қатысын анатомиялық зерттеуге материал ретінде Батыс Қазақстан облысының ет комбинаты мен қасапханаларынан алынған 4-8 жасар клиникалық сау түйелерден алынған 12 препарат (бас) қолданылды. Морфометриялық зерттеу үшін сілекей бездерінің салмағы мен ұзындық өлшемдері – ұзындығы, ені және қалыңдығы алынды, оларды циркульмен, миллиметрлік сызғышпен және штангенциркульдің көмегімен өлшедік. Бездің салмағын ВЛКТ – 500 г-М зертханалық таразысында өлшенді.

Бактриан түйесінің басының бет бөлімінің негізгі сілекей бездеріне: құлақ маңы және жақ бездері жатады.

Бактриан түйесінің құлақ маңы сілекей безінің негізгі бөлігі төменгі жақтың артқы аумағында орналасады. Ол төменгі жақтың артқы шетінің ұзына бойына орналасқан. Без үстінен құлақ қалқанының түсіргішімен және тері асты бұлшық етімен жабылған. Құлақ маңы безінің жоғарғы ұшы құлақ қалқанының негізіне жетіп жатады, көптеген ересек жануарларда бездің бұл жердегі ені 4,45 ± 0,48 см және қалыңдығы 2,36 ± 0,10 см тең болып келеді (2-а сурет).

Бездің жоғарғы ұшынан дистальды бағытта 1,5-2,5 см шегініп, жартылай сілекей безімен жабылған құлақ маңы лимфа түйіні орналасады (2-д сурет), ол төмен түсіп шайнау бұлшық етінің артқы шетін бойлайды (2-ж сурет). Без төменгі жақтың артқы бұрышында жіңішке тармақпен аяқталады, оның жоғарғы шетіндегі ені орта есеппен 3,42 ± 0,04 см және қалыңдығы 2,93 ± 0,37 см (2-в сурет). Бактриан түйесінің құлақ маңы сілекей безінің көп бөлігі төменгі жақтың артқы шетінің орта бөлігінде орналасады, оның бұл жердегі ені – 7,20 ± 0,02 см, қалыңдығы 1,54 ± 0,03 см (2-б сурет).

Ересек бактриан түйелерінің құлақ маңы безінің салмағы орта есеппен 103,6 ± 0,45 г тең.

Құлақ маңы сілекей безінің алдыңғы шетінің проекциясы құлақ негізінен шықшыт доғасына дейін және одан төмен қарай төменгі жақтың артқы бұрышына дейін созылған сызық бойымен жүреді (1-а сурет).

Жақ сілекей безі – glandulae buccalis бактриан түйесінде басқа да күйістілерде сияқты екі негізгі бөлімге бөлінген – вентральдық – glandulae buccalis ventrales және дорсальдық бөлігі – glandulae buccalis dorsales.

Вентральдық жақ безі қомақты, тығыз бөлігі мен сусымалы пакетке бөлінеді, ол жануардың ауыз бұрышына дейін созылып жатады. Қомақты бөлігі анық байқалады және оның үлкен бөлігі шайнау бұлшық етінің алдыңғы шетін бойлай орналасады, содан кейін ұсақ бөліктер түрінде үшкірленіп келіп, оральды бағытталады да жақ бұлшық етіне тығыз жанасады және үстінен өте жұқа жақ бұлшық етімен жабылады.

Вентральдық жақ сілекей бездерінің пішіні мен орналасу орынын нақты анықтау үшін біз келесідей сызықтық өлшемдер жүргіздік:

1) орбитаның төменгі шеті деңгейінде бездің ені орта есеппен 3,8 ± 0,14 см, бездің қалыңдығы 1,4 ± 0,08 см тең болды.

2) көздің ішкі бұрышы деңгейінде ені – 1,2 ± 0,15 см, ал қалыңдығы 0,8 ± 0,02 см тең болды.

3) көз асты саңылауының деңгейінде жақ безінің ені 0,9 ± 0,17 см және қалыңдығы 0,7 ± 0,04 см құрады.

4) бактриан түйесінің жақ безінің алдыңғы оральды шеті танау-жақ бұрышы деңгейінде орналасты, оның өлшемдері орта есеппен: ені – 0,7 ± 0,04 см және қалыңдығы 0,5 ± 0,16 см.

Вентральдық жақ безінің жалпы ұзындығы орта есеппен ересек түйелерде 14,7±0,03см тең болды.

Вентральдық жақ сілекей безінің жоғарыда келтірілген морфометриялық мәліметтерін талдай келе ол төменгі жақтың жоғарғы шетін бойлап орналасқан, пішіні біртіндеп жіңішкеретін таспа түрінде деп айтуға болады. Без жақ бұлшық етінің төменгі шетіне тығыз жанасады және үстінен жұқа бұлшық ет – төменгі еріннің түсіргішімен жабылады. Вентральдық жақ сілекей безінің аборальды (артқы) ұшы шайнау бұлшық етінің алдыңғы шетіне жанасқан үлкен қомақты бөлімінен тұрады. Ересек жануарларда вентральдық жақ сілекей безінің қомақты бөлігі көп жағдайда – 80 %, көз асты саңылауы деңгейіне және қалған жағдайда – 20 %, танау-жақ бұрышына дейін орналасады.

Вентральдық жақ сілекей безінің жоғарғы шетінің проекциясы соңғы молярдан төменгі жақтың алвеолярлық шетімен соңғы ит тісінің артқы шетіне дейін созылған сызық сәйкес келеді (1 сурет, в).

Вентральдық жақ сілекей безінің төменгі шетінің проекциясы орбитаның төменгі шетінің деңгейіндегі төменгі жақ өсіндісінен алға қарай ауыз бұрышына дейін созылған сызық сәйкес келеді (1 сурет, г)

Ересек жануарлардың вентральдық жақ сілекей безінің орташа салмағы 18,7 ± 0,01г тең болды.

Дорсальды жақ сілекей безі жоғарғы жақтың төменгі шетін бойлай орналасқан. Оның ең үлкен және қалың бөлігі дорсальды жақ сілекей безінің аборальды (артқы) бөлігі болып табылады. Ол шықшыт доғасының астында орбитаның негізінде орналасқан және шайнау бұлшық етінің алдыңғы шеті мен бет төмпегіне тығыз жанасады, осылайша ол иттерде бездің көздік (орбитальды) бөлігіне ұқсас болып келеді.

Дорсальды жақ сілекей безі оральды-вентральдық бағытта жақ бұлшық етінің алдыңғы шетінен танау-жақ бұрышына дейін жіңішке және жалпақ таспа түрінде өтіп жатады, бұдан әрі бездің ыдыраған бөлігі ауыз бұрышына дейін жетіп ерін сілекей бездері сияқты жалғасады.

Дорсальдық жақ сілекей безінің қомақты бөлігін морфометриялық зерттеу кезінде келесідей сызықтық өлшемдер алынды:

1) орбитаның төменгі шеті деңгейіндегі ені, ересек жануарларда, орта есеппен 1,7 ± 0,24см, қалыңдығы 1,2 ± 0,02 см.

2) көздің ішкі бұрышы деңгейіндегі ені 1,7 ± 0,014 см, қалыңдығы 0,7 ± 0,01 см.

3) көз асты саңылауы деңгейінде бездің ені 2,1 ± 0,16 см, қалыңдығы 0,6 ± 0,07 см құрады.

4) танау-жақ бұрышы деңгейінде дорсальдық бездердің ені 1,8 ± 0,02 см, қалыңдығы 0,7 ± 0,04 см.

Дорсальдық жақ сілекей безінің оральды бөлігі біршама кең және ірі бөліктерден тұрады. Бездің ауыз қуысына шығу жолы соңғы азу тісінің үстінде ашылады.

Дорсальдық жақ сілекей бездерінің жоғарғы шетінің проекциясына көз асты саңылауы деңгейінде шықшыт доғасының алдыңғы шетінен бет төмпегіне дейін және сәйкес жағының ит тісіне дейін созылған сызық сәйкес келеді (1 сурет, д).

Дорсальдық жақ сілекей безінің төменгі шетінің проекциясына жоғарғы жақтың алвеолярлық шетімен ауыз бұрышына дейін созылған сызық сәйкес келеді (1 сурет, е).

Дорсальдық жақ сілекей безінің жалпы ұзындығы орта есеппен 18,6 ± 0,17 см. Ересек бактриан түйелерінің дорсальдық сілекей безінің салмағы орта есеппен 12,2 ± 0,18 г тең болды.

Құлақ маңы сілекей безінің ағу жолы бірнеше ұсақ шығару жолдарының бірігуі нәтижесінде түзіледі. Түйелерде ағу жолының ауызы төменгі жақтың артқы шетінің ортасынан төмен деңгейде шығады. Ересек жануарларда төменгі жақтың артқы шетінің ұзындығы 16,3 ± 0,07 см болса, жалпы ағу жолының тамыры төменгі жақ ұзындығының 11,2 ± 0.04 см деңгейінде басталады. Құлақ маңы сілекей безінің ағу жолы бұдан әрі үлкен шайнау бұлшық етінің бетімен алға қарай және жоғары бағытталады. Бұлшық еттің алдыңғы шетінде ол бет венасының астына өтеді (2 сурет, д). Бұдан кейін құлақ маңы сілекей безінің ағу жолы дорсальдық бет безінің алдыңғы шетіне жанасып алға қарай өтеді де, үшінші премолярдың орта тұсында ауыз қуысына ашылады (2 сурет, Құлақ маңы сілекей безінің а ғу жолының диаметрі орта есеппен 4,24 ± 0,04 мм (2 сурет, д).

Құлақ маңы сілекей безінің ағу жолының проекциясына төменгі жақтың артқы ұшынан көздің сыртқы бұрышының ортасында орналасқан нүктеге және одан әрі төменгі жақтың төменгі шетімен үшінші премолярдың ортасына дейін созылған сызық сәйкес келеді (1 сурет, ж).

Қорыта келе, біз бактриан түйесінің басының бет бөлімінде хирургиялық операциялар жасау кезінде сілекей бездерінің және құлақ маңы сілекей безінің топографо-проекциялық анатомиясын ескеруді ұсынамыз.

2. Бактриан түйесінің жақ сілекей безі барлық күйістілерде сияқты анатомиялық проекциялары жақсы байқалатын екі негізгі бөлімнен түзілген – вентральдық және дорсальдық.

3. Ересек жануарларда вентральдық жақ сілекей бездерінің қомақты бөлігі көп жағдайда – 80 % көз асты саңылауы деңгейіне дейін, және қалған жағдайда – 20 % танау-жақ бұрышына дейін жетіп орналасады.

4. Бактриан түйесінде құлақ маңы сілекей безінің ағу жолы безден төменгі жақтың артқы жетінің екінші және үшінші бөліктерінің ортасындағы шекарада шығып дорсальдық жақ бездерінің төменгі шетіне беттесе келіп үшінші премолярдың орта тұсында ауыз қуысына ашылады.

2. Днекешев, А. К. Особенности постановки и форты глазницы у верблюда-бактриана / А. К. Днекешев, А.К.Жубандыков // «Сохранение окружающей среды – важнейшая проблема современности» материалы Междунар.науч-практ. конф. 24-25 июня 2005г. – Орал. – 2005. – Ч.1. – С. 325-326.

3. Днекешев, А. К. Проекционная топографическая анатомия околоушной слюнной железы и её протока у верблюда-бактриана / А. К. Днекешев // Вестник Саратовской госагроуниверситета им. Н. И. Вавилова. – 2007. – №2. – С. 7-8.

4. Днекешев, А. К. Бактриан түйесінің көз астыңғы тесігінің құрылысындағы вариациялық өзгерістер / А.К.Днекешев // Профессор Ә. Ә. Карасаевтың 80 жасқа толуына арналған «Ветеринария және мал шаруашылығының нарық жағдайындағы дамуының басты бағыттары: мәселелері, тәжірибе, келешек» атты аймақтық ғылыми-практ. конф. материалдары. – Орал. 2007. – Б. 20-21.

УДК 619:616.9.636.2
ВЫЯСНЕНИЕ САЛЬМОНЕЛЛОНОСИТЕЛЬСТВА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В ЗАПАДНО-КАЗАХСТАНСКОЙ ОБЛАСТИ
Г. Г. Есенгалиев, соискатель
Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана
Бұл мақалада сальмонеллездің таралу себептері мен індеттің жұғу жолдары көрсетілген және Батыс Қазақстан облысында ірі қара малының сальмонелла тасымалдаушылығы туралы мағлұмат берілген. Зерттеу нәтижесіне сәйкес 22 сиырдан алынған патологиялық материалдан 10 ірі қарада сальмонелла тасымалдаушылығы анықталған, бұнда тексерілген 88 сынамадан 18 сальмонелла культурасы бөлініп алынған.
Показаны факторы распространения сальмонеллеза, пути передачи инфекции и приведены данные о сальмонеллоносительстве крупного рогатого скота в Западно-Казахстанской области. Бактериологическим исследованием патматериалов от 22 коров у 10 было установлено бактерионосительство, при этом из 88 взятых проб было выделено 18 культур сальмонелл.

The factors of salmonellosis diffusion, the ways of infection transmission are shown and the data about salmonella-carriers of cattle in West Kazakhstan Region is given. By bacteriological reseach of patological materials, the presence of bacteria was determined at 10 of 22 cows, and salmonellosis cultures were discriminated 18 from 88 taken examples.
Проблема сальмонеллеза актуальна не только в связи с широким распространением, но и вследствие течения болезни в виде латентных и стертых клинических форм и возможности перехода в длительное бактерионосительство [1]. Сальмонеллоносительство имеет большое значение в распространении сальмонеллеза. В связи с этим в последние годы большое внимание уделяют проблеме выявления бактерионосителей.

Из литературных данных известно, что для сальмонеллеза характерно бактерионосительство, то есть бессимптомное течение болезни.

Основным источником возбудителей являются прежде всего латентные бактерионосители, которые образуют основную часть непрерывной эпизоотической цепи [2].

Ущерб, наносимый этой болезнью, заключается не только в гибели животных, но и в том, что переболевшие животные в течение длительного периода времени являются бактерионосителями и становятся постоянным источником контаминации окружающей среды. Ряд исследователей считают, что переболевшие животные пожизненно остаюся носителями сальмонелл [2, 3, 4].

Пути распространения сальмонеллеза весьма разнообразны, а этиология заболевания человека в большинстве случаев связана с употреблением инфицированных продуктов и поэтому особую потенциальную опасность в эпидемиологическом отношении представляет убой сальмонеллоносителей, при переработке которых возможно обсеменение продуктов убоя сальмонеллами [3].

Продукты животного происхождения (мясо, молоко, яйца), полученные от животных сальмонеллоносителей при недостаточной тепловой обработке могут вызывать пищевые токсикоинфекции у людей. Поэтому, борьба с пищевыми токсикоинфекциями является весьма актуальной повседневной задачей ветеринарных и медицинских работников [2, 3].

Заболевание сальмонеллезом и носительство сальмонелл у крупного рогатого скота имеет выраженную тенденцию к росту. По данным многих исследователей наиболее широко распространено носительство среди крупного рогатого скота 10-21,1 %, овец – 4-30 %, лошадей – 7,2-47,5 %, свиней – 5,5-22,5 %, кур – 5-22,2 %, уток – 10-15 %, гусей – 5-20 % [3, 5].

Сальмонеллоносительство при убое клинически здоровых животных регистрируется в 0,1-7,7 %, а у вынужденно убитых – в 7,2-12,85 % случаев, что поддерживает эпидемическую напряженность по сальмонеллезу на высоком уровне [6].

Особенностью сальмонеллеза последних лет является большая частота бактерионосительства, обнаруживаемого лишь при обследовании различных групп животных и людей по самым разным причинам. Это связано с широкой циркуляцией многочисленных сероваров салмонелл в природе, полидетерминантностью факторов вирулентности возбудителей, полиэтиологичностью, разнообразием путей внедрения в организм животного и человека, а также селекцией и циркуляцией штаммов, несущих R-факторы, сформировавшихся под влиянием антибиотиков и химиопрепаратов [2].

Многие исследователи утверждают, что в организме животных, переболевших сальмонеллезом, возбудитель сохраняется длительное время и может выделяться во внешнюю среду с фекалиями, мочой, слюной, носовыми истечениями, контаминируя объекты внешней среды, которые служат факторами распространения инфекций. Наибольшую опасность представляют абортировавшие животные, которые долгое время являются сальмонеллоносителями [1, 2, 3, 6].

И. С. Загаевский [7] изучая роль животных-сальмонеллоносителей, на неблагополучной по сальмонеллезу ферме крупного рогатого скота и свиней, а также из молока коров выделил следующие серотипы: S. dublin – 73 %, S. typhimurium – 18 %, S. enteritidis – 7 % и S. choleraesuis – 2 %, от животных неблагополучных свиноферм – S. choleraesuis – 68 %, S. typhisuis – 14 %, S.dublin – 11 % и S. typhimurium – 7 %.

Анализ статистических данных за последние годы указывает на повышение числа случаев абортов у коров вызываемых S. dublin и S. typhimurium. Инфекция проявляется в нескольких формах, она имеет характер эпизоотий, охватывающий ограниченное количество коров и телок, и сопровождается абортами, рождением слабых и мертвых телят. В других хозяйствах сальмонеллезная инфекция протекает в более тяжелой форме, отличающейся массовыми абортами и частыми рождениями мертвых телят. На некоторых фермах, где ранее не было вспышек сальмонеллеза, инфекция проявляется спорадически.

Инфицированные сальмонеллами животные могут становится бактерионосителями. Эти животные выглядят клинически здоровыми: при воздействии стресс-факторов скрытая форма инфекции переходит в острую или начинается активное выделение возбудителя во внешную среду. Наиболее часто обострение инфекции происходит в период стельности. Скрытая форма инфекции очень опасна, поскольку не существует надежных методов её диагностики. Инфекции, вызываемые S. dublin и S. typhimurium являются зооантропонозной.

Заражение людей происходит от инфицированных коров, наиболее часто при абортах, а также в результате использования в пищу молока. Изоляция инфицированных животных, сжигание абортированных плодов и дезинфекция животноводческих помещений, где произошел аборт, снижает риск распространения инфекции.

Анализ литературных данных свидетельствует, что наиболее часто встречающимися сероварами сальмонеллеза крупного рогатого скота являются S. dublin и S. typhimurium. При этом следует отметить увеличение удельного веса S. typhimurium, вызывающего заболевание и носительство сальмонелл у крупного рогатого скота.

Выявление сальмонеллоносительства является сложной и труднорешимой задачей, так как в последнее время сальмонеллезы протекают в бессимптомной, стертой форме. И эта форма инфекции очень опасно, поскольку не существует надежных методов ее диагностики.

Цель данной работы – изучение распространения салмонелл среди здорового крупного рогатого скота.
Материалы и методы исследования
Отбор материалов для исследований производили в Акжайкском сельском округе Теректинского района Западно-Казахстанской области, где на протяжении 2-5 лет периодически отмечали энзоотические вспышки сальмонеллеза среди крупного рогатого скота. Материалом исследований служили пробы крови, сыворотки, влагалищная слизь, взятых от клинически здоровых коров с соблюдением правил асептики и антисептики.

Для выделения культуры возбудителя сальмонеллеза в лаборатории влагалищную слизь, кровь подвергали бактериологическому исследованию с высевом на дифференциальные среды Эндо, Плоскирева, висмут-сульфитный агар.

Первичный отбор культур и определение видовой принадлежности сальмонелл проводили на основании характерных морфологических, тинкториальных, культурально-биохимических свойств и со специфическими сыворотками с помощью монорецепторных сывороток, согласно прилагаемых наставлений.

Серологические свойства выделенных культур изучали в реакции агглютинации на стекле с поливалентной агглютинирующей сальмонеллезной сывороткой группы В, С, Д, Е и монорецепторными О- и Н-сальмонеллезными сыворотками. Оценку реакции проводили в крестах по интенсивности образования осадка и просветлению надосадочной жидкости.

При проведени нами бактериологических исследований патматериалов от 22 коров у 10 животных было установлено бактерионосительство, при этом из 88 взятых проб было выделено 18 культур сальмонелл. Эти культуры в морфологическом отношении были характерны для семейства энтеробактерий, являлись палочковидными с закругленными концами, распологались в мазках одиночно, парами, короткими цепочками и по Граму красились отрицательно.

При посеве на МПА наблюдали рост серо-голубоватых колоний с ровными краями, а на МПБ отмечали равномерное помутнение среды с образованием рыхлого осадка. На средах Эндо и Плоскирева отмечался рост бесцветных колоний, на висмут-сульфитном агаре – типичные колонии черного цвета с металлическим блеском.

Выделенные чистые культуры идентифицировали методом изучения биохимических свойств путем культивирования на среде Гисса. Изучаемые нами культуры обладали способностью ферментировать глюкозу, маннит, арабинозу, дульцит, ксилозу, галактозу, в свою очередь они не расщепляли мочевину, лактозу, сахарозу, не разжижали желатин и не продуцировали индол. Большинство культур выделяли сероводород. Таким образом, изолированные культуры сальмонелл по морфологическим, культуральным, биохимическим свойствам не отличались от эталонных штаммов сальмонелл.

Результаты исследований
Приведенные материалы свидетельствуют о том, что в Западно-Казахстанской области, несмотря на кажущееся на первый взгляд относительное благополучие, эпизоотическая ситуация продолжает оставаться напряженной. На наш взгляд, это объясняется прежде всего недостаточной эффективностью проводимых противосальмонеллезных мероприятий, а также неудовлетворительной постановкой диагностической работы; признанием неблагополучными по сальмонеллезу лишь тех хозяйств, где имеются случаи абортов и падежа телят; наличием во многих хозяйствах, считающихся благополучными, коров-сальмонеллоносителей.

Проведенные исследования показали, что сальмонеллы присутствуют в организме у клинически здоровых коров. Это свидетельствует о перманентной персистенции сальмонелл в организме животных, способствующей при соответствующих условиях (стресс, истощение) вспышкам сальмонеллеза крупного рогатогого скота. В результате посевов на питательные среды и микроскопирования выделенные нами культуры отнесены S. dublin, S. tyрhimurium и S. еnteritidis.

2. Матвиенко, Б. А. Сальмонеллезы животных / Б. А. Матвиенко : в кн. Болезни сельскохозяйственных животных. – Алма-Ата. – 1986. – С. 32-53.

3. Попова, П. П. Экология сальмонелл и эпидемиология сальмонеллезов / П. П. Попова, М. М. Ременцова, А. А. Ким – Алма-Ата : Наука Каз. ССР. – 1987. – С. 126.

4. Ермолаев, А. П. О сальмонеллоносительстве среди здорового крупного рогатого скота / А. П. Ермолаев, К. М. Позднякова, Л. М. Носова и др. // Научные труды Омского вет. института – 1976. – Вып. 2. – С. 150-151.

5. Жанузаков, Н. Ж.. Эпизоотология, вопросы природной очаговости и профилактики сальмонеллезов : Методические рекомендации / Н. Ж.. Жанузаков, П. П. Попова и др. – Караганда – 1991. – С. 22.

6. Серегин, И. Г. Еще раз о профилактике сальмонеллеза у убойных животных / И. Г. Серегин, А. Л. Яцута // Мясная индустрия. – 2001. – № 1. – С. 43-46.

7. Загаевский, И. С. Изучение сальмонеллоносительства у животных / И. С. Загаевский // Ветеринария – 1971. – № 1. – С. 51-53.

УДК 619:616.98.42.636.3

Изучение корреляционных зависимостей между гематологией и биохимией крови иммунизированных животных и особенностями их специфической иммунопрофилактики против бруцеллеза может привести к созданию новых подходов дифференциального диагностирования вакцинированных животных, внести уточнения в характеристику иммунологического статуса животного при бруцеллезе, а также при применении различных противобруцеллезных вакцин [1, 2].

Вопросы специфической профилактики бруцеллеза коз до сих пор остаются малоизученной проблемой [3].

Учитывая это, нами проведены гематологические и биохимические исследования крови коз при иммунизации их живой и неживой противобруцеллезной вакциной.

Исследования проведены в КХ «Алтынбек», Чингирлауского района, Западно-Казахстанской области и в лаборатории ЗапКазНИВС. Гематологический анализ проводили путем микроскопирования мазков крови. Биохимический анализ крови проводили на автоматизированном биохимическом анализаторе.

Опыты по изучению гематологического и биохимического состава крови коз, в зависимости от применяемых противобруцеллезных вакцин заложены в КХ «Алтынбек». В эксперименте использовано 20 голов коз. Опытных жи­вотных разделили на 2 группы по 10 голов в каждой.

Перед началом эксперимента у опытных животных производили отбор крови для гематологического и биохимического анализа. Убедившись, что все результаты находились в пределах нормы, животных иммунизировали противобруцеллезными вакцинами. Коз I группы прививали неживой вакциной КазНИВИ в объеме 1 см³ подкожно. Животных II группы иммунизировали вакциной из штамма Brucella melitensis Rev-I в дозе 2 млрд. м.к. в объеме 2 мл подкожно. В качестве контроля брали показатели крови в норме.

В результате проведенных исследований по изучению гематологического профиля крови коз, привитых неживой противобруцеллезной вакциной КазНИВИ и вакциной из штамма Br. melitensis Rev-I выявлено следующее таблица 1. До вакцинации гематологические показатели крови у коз находились в пределах нормы. На 7 сутки опыта отмечалось резкое изменение количества лейкоцитов, нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов. Количество лейкоцитов увеличено в сравнении с нормой на 4,0-5,5 тыс., разница в показаниях между группами, привитыми разными вакцинами, составляет 1,5 тыс. увеличения в пользу животных, привитых вакциной из штамма B. melitensis Rev-I. У этих животных суммарный показатель нейтрофилов увеличен на 43 % в сравнении с довакцинальным периодом, а в группах, где использовалась неживая вакцина КазНИВИ, на 36 %, при этом количество лимфоцитов и моноцитов уменьшено в среднем соответственно на 31,0 % (I группа), на 28,2 % (II группа) и на 1,5 % (I и II группа). Показатели базофилов и эозинофилов находятся в пределах нормы. Данный период можно характеризовать как фазу нейтрофильной борьбы.

В дальнейшие сроки отмечалось постепенное снижение многих показателей крови. В частности, уменьшилось количество нейтрофилов и лейкоцитов, по срав­нению с начальным периодом. Отмечен моноцитоз и лимфоцитоз. К 30 суткам отмечена постепенная стабилизация всех показателей, с сохранившимся лимфоцитозом.

Таким образом, вышеприведенные данные дают наглядное представление о том, что при попадании бруцеллезного антигена в организм коз, в первую очередь, на антигенное раздражение реагируют лейкоциты, в частности число нейтрофилов увеличивается в 2 раза по сравнению с довакцинальным перио­дом. Затем происходит увеличение числа моноцитов (в 2 раза). Также отмечается лимфоцитоз, имеет место явление эозинофилии. Вместе с тем, гематологические по­казатели крови животных иммунизированных вакциной из штамма B. melitensis Rev- I, были значительно выше, либо ниже (в зависимости от нормы) во все сроки исследований, чем показатели крови животных, привитых неживой противобруцеллезной вакциной КазНИВИ.

Это свидетельствует о том, что вакцина B. melitensis Rev-I патогенно воздей­ствует на прививаемый организм.

Схема опыта по изучению биохимического состава крови коз соответствует таковой по изучению гематологического состава крови. В ре­зультате проведенного биохимического исследования состава крови коз выявлены отклонения от нормальных величин, связанные с применением разных типов противобруцеллезных вакцин таблица 2. Однако наибольшие сдвиги в составе крови животных, не зависимо от возраста, отмечаются в случае иммунизации их вакциной из штамма Br. melitensis Rev-I.

На 7 сутки после иммунизации количество общего белка было снижено в большей степени во II группе животных на 3 % по сравнению с довакцинальными показателями, привитых вакциной из штамма Br. melitensis Rev-I, тогда как в I группе уровень снижен на 1,6 %.

Во II группе, где применялась вакцина из штамма Br. melitensis Rev-I, уровень кальция упал на 2,9 %, а фосфора – увеличился на 1,8 %. Тогда как в I группе пока­затели удерживались на уровне, соответственно 2,2 и 1,5 %.