Национальной академии наук республики казахстан

1 Muralikrishna,G., Nirmala M. Cereal б-amylase – an overview // Carbohydrate Polymers. 2005. V.60. Р. 163-173.

2 Robyt J.F. Inhibition, activation, and stabilization of б-amylase family enzymes // Biologia, Bratislava. 2005. V.60. P.17-26.

3 Jacobsen T., Slotfeld-Ellingsen D. Phytic acid and metal availability: A study of Ca and Cu binding // Cereal. Chem. 1983. V.60. P.392-395.

4 Bohn, L., Josefsen, L., Meyer, A.S., Rasmussen, S.K. Quantitative analysis of phytate globoids isolated from wheat bran and characterization of their sequential dephosphorylation by wheat phytase // J. Agric. Food Chem.2007. V.55(18). Р.7547-7552.

5 Hidvegi M., Lasztity R. Phytic acid content of cereals and legumes and interaction with proteins // PeriodicaPolytechnica, Ser. chem. 2002. V.46. P.59-64.

6 Bohn, L., Meyer, A.S., Rasmussen, S.K. Phytate: impact on environment and human nutrition. A challenge for molecular breeding // J. Zhejiang Univ. Sci. 2008. V.9. P.165-191.

7 Гильманов М.К., Фурсов О.В., Францев А.П. Методы изучения ферментов растений. Алма-Ата: Наука, 1981. – 91 с.

1 Muralikrishna,G., Nirmala M. Carbohydrate Polymers, 2005,V.60. Р.163-173.

2 Robyt J.F. Biologia, Bratislava, 2005, V.60. P.17-26.

3 Jacobsen T., Slotfeld-Ellingsen D. Cereal Chem., 1983, V.60. P.392-395.

4 Bohn, L., Josefsen, L., Meyer, A.S., Rasmussen, S.K. J. Agric. Food Chem., 2007, V.55(18). Р.7547-7552.

5 Hidvegi M., Lasztity R. PeriodicaPolytechnica, Ser.chem., 2002, V.46. P.59-64.

6 Bohn, L., Meyer, A.S., Rasmussen, S.K. J. Zhejiang Univ. Sci., 2008, V.9. P.165-191.

7 Gilmanov M.K., Fursov O.V., Francev A.P. Alma-Ata: Nauka, 1981, 92 (in Russ).

(ҚР БҒМ ҒК М.А.Айтхожин атындағы молекулалық биологии және биохимии институты, Алматы қ.)

БИДАЙ ДӘНІ α-АМИЛАЗАСЫНЫҢ ФИТАТ НАТРИЙМЕН ИНГИБИРЛЕНУІ

Фитат натрийдің әсерінен бидай дәні α-амилазасы изоферментінің екі тобының белсенділігінде айтарлықтай айырмашылықтар болатыны анықталды. Фитат көп жағдайда өсу α-амилазасын (Ами1 тобы) баяулатады. Керсінше, Ами2 изоферменты бұл қосылыстан аз бәсеңдеді. Фитаттың α-амилаза белсенділігіне ингибиторлық әсері басқа хелатор екі валентті металл - ЭДТА-Na₂ әсерімен салыстырмалы болады.

УДК 628.35

В последнее время липазы используются как ключевые ферменты в стремительно развивающейся сфере биотехнологии, благодаря их многогранным свойствам, которые находят применение в широком спектре промышленного значения, например, как пищевые технологии, моющие средства, химическая промышленность и биомедицинские науки [1, 2].

Липазы являются продуктами жизнедеятельности микроорганизмов. Бактериальные липазы играют важную роль на коммерческих предприятиях. К одним из основных продуцентов фермента относятся бактерии родов Bacillus, Pseudomonas, Burkholderia.

Для промышленных целей наибольший интерес представляют внеклеточные ферменты, выделяемые микроорганизмами в окружающую среду, так как их дальнейшая очистка значительно проще и дешевле, чем препаратов из внутриклеточных ферментов [3].

Спектр применения микробных липаз достаточно широк. Эффективность их использования зависит от ряда факторов, прежде всего от их специфичности и условий проведения конкретного биотехнологического процесса. Большинство липаз активны в широком диапозоне рН и температуры, хотя щелочные бактериальные липазы являются более распространенными.

В большинстве случаев бактериальные липазы имеют оптимум действия в диапазоне pH от нейтрального (pH 7,0) до щелочного (pH 11,0) [4]. Оптимальные значения pH среды для выращивания дрожжевых продуцентов липазы находятся в широком диапазоне от 2 до 10 и различаются у разных культур. Согласно большинству литературных данных, микроскопические грибы активно развиваются и интенсивно образуют липазу при pH 4,2-7,5 [5].

Оптимальная температура для синтеза липазы обычно соответствует температуре роста микроорганизма. В основном бактериальные липазы имеют температурный оптимум в диапазоне от 30 до 60°С. Однако, существуют данные о бактериальных липазах с оптимумами, лежащими в более низких или высоких температурных пределах [4].

Целью исследований являлось изучение влияния рН среды и температуры на деструкцию растительных масел бактериальными штаммами – продуцентами липаз.

Объектами исследований служили штаммы бактерий, обладающие липолитической актив-ностью Aeromonas salmonicida БЖ-1 и Aeromonas piscicola БЖ-2.

Эксперименты по изучению влияния рН среды на деструкцию растительных масел (оливковое, кукурузное, подсолнечное) штаммами Aeromonas salmonicida БЖ-1 и Aeromonas piscicola БЖ-2 проводили в колбах объемом 500 мл, содержащих по 100 мл среды Раймонда с разной рН (4, 5, 7, 8, 9). В качестве единственного источника углерода вносили растительные масла в количестве 1 мас.%. Инокулят вносили в виде суточной культуры микроорганизмов с содержанием клеток 10⁹ КОЕ/мл. Культивирование проводили при комнатной температуре, на качалке со скоростью вращения 180 об/мин.

Эксперименты по изучению влияния температуры на деструкцию растительных масел проводили в колбах объемом 500 мл, содержащих по 100 мл среды Раймонда. В качестве единственного источника углерода вносили растительные масла в количестве 1 мас.%. Инокулят вносили в виде суточной культуры микроорганизмов с содержанием клеток 10⁹ КОЕ/мл. Культивирование проводили при температуре 5, 22, 30, 37, 50 ^оС.

Остаточное содержание масел определяли гравиметрическим методом после экстракции гексаном.

Результаты и обсуждение

Изучено влияние рН среды и температуры на деструкцию растительных масел (оливковое, кукурузное, подсолнечное) штаммами Aeromonas salmonicida БЖ-1 и Aeromonas piscicola БЖ-2.

Штаммы культивировали на среде Раймонда с 1% растительного масла при рН 4, 5, 7, 8, 9 и при температуре 5, 22, 30, 37, 50 ^оС в течение 3 суток. Остаточное масло экстрагировали гексаном, степень деструкции определяли гравиметрическим методом.

Результаты исследования показали, что кислая среда отрицательно влияла на рост штаммов липолитических микроорганизмов (рисунки 1, 2, 3). Прирост биомассы был незначительный. В нейтральной среде оптическая плотность культуральной жидкости увеличивалась в 7-8 раз при росте штаммов БЖ-1 и БЖ-2 на оливковом и подсолнечном масле, в 8-9 раз – при росте на кукурузном масле. В слабо щелочных условиях биомасса возрастала в 12-15 раз, в щелочных – в 8-10 раз.

а б

а б

Рисунок 2 – Влияние рН среды на рост штаммов БЖ-1 (а) и БЖ-2 (б) на кукурузном масле

а б

Таблица 1 – Утилизация растительных масел штаммами БЖ-1 и БЖ-2 при разных рН среды

В щелочных условиях лучше всего окислялось оливковое масло (60,3-78,1%). Наименьшая степень деструкции в этих условиях отмечена для подсолнечного масла – 53,0-60,3%, тогда как в нейтральной среде, наоборот, оно утилизировалось лучше всего – 58,1-59,7%. Наименьшую активность при рН 7 штаммы проявили на кукурузном масле.

Исследовано влияние температуры (5, 22, 30, 37, 50 ^оС) на рост штаммов БЖ-1 и БЖ-2 на растительных маслах.

Результаты показали, что оптимальной для роста липолитических культур является температура 30^оС (рисунки 4, 5, 6). Биомасса в этих условиях возрастала в 7-9 раз. При 22 и 37^оС прирост биомассы снижался в 2-3 раза. При температуре 5 и 50^оС штаммы БЖ-1 и БЖ-2 росли слабо.

а б

Рисунок 4 – Влияние температуры на рост штаммов БЖ-1 (а) и БЖ-2 (б) на оливковом масле

а б

Рисунок 5 – Влияние температуры на рост штаммов БЖ-1 (а) и БЖ-2 (б) на кукурузном масле


а б
Рисунок 6 – Влияние температуры на рост штаммов БЖ-1 (а) и БЖ-2 (б) на подсолнечном масле
Определена степень утилизации растительных масел штаммами БЖ-1 и БЖ-2 при температуре 22, 30 и 37^оС (таблица 2).

Таблица 2 – Утилизация растительных масел штаммами БЖ-1 и БЖ-2 при разных температурах

Из данных таблицы видно, что наиболее активно штаммы окисляли растительные масла при температуре 30-37 ^оС. При этом степень деструкции составляла более 60%. При комнатной температуре окислительная способность снизилась на 5-6% для оливкового и кукурузного масла, на 2-3% для подсолнечного масла.

Таким образом, результаты исследования показали, что оптимальными условиями для окислительной активности липолитических штаммов являются рН 7-9, температура 30-37 ^оС. Кислая среда, низкая (4 ^оС) и высокая температура (50 ^оС и выше) приводят к значительному снижению активности штаммов.

ЛИТЕРАТУРА

1 Gupta R., Gupta N., Rathi P. Bacterial lipases: an overview of production, purification and biochemical properties // Appl. Microbial. Biotechnol. – 2004. – V. 64. – P. 763-781.

2 Sharma R., Chisti Y., Banerjee U.S. Production, purification, characterization and applications of lipases // Biotechnol. Advances. – 2001. – V. 19. – P. 627-662.

3 Дужак А. Б., Панфилова З.И., Васюнина Е.А. Выделение и свойства препаратов внеклеточных липаз природного (В-10) и мутантного (М-1) штаммов Serratia marcescens // Прикладная биохимия и микробиология. - 2000. – Т. 36, № 4. – С.402-411.

4 Gupta R., Rathi P., Gupta N., Bradoo S. Lipase assays for conventional and molecular screening: an overview // Biotechnol. Appl. Biochem. – 2003. – V. 37. – P 63-71.

5 Поскрякова Н.В. Разработка основы биопрепарата для деструкции жиров: дисс. канд. биол. наук. – Уфа, 2007. – 115 с.

1 Gupta R., Gupta N., Rathi P. Appl. Microbial. Biotechnol., 2004, 64, 763-781.

2 Sharma R., Chisti Y., Banerjee U.S. Biotechnol. Advances, 2001, 19, 627-662.

3 Duzhak A. B., Panfilova Z.I., Vasjunina E.A. Prikladnaja biohimija i mikrobiologija, 2000, Т. 36, № 4, 402-411.

4 Gupta R., Rathi P., Gupta N., Bradoo S. Biotechnol. Appl. Biochem., 2003, 37, 63-71.

5 Poskrjakova N.V. Diss. … kand. biol. nauk, 2007, 115.

УДК 615.32:618.1

(¹JSC «National Research Center for Maternal and Child Health» of MPH of the RK,

Надо также иметь в виду высокую абсолютную частоту ряда заболеваний, передающихся половым путем (ЗППП), в частности, хламидиоз, трихомоноз, гонорея, кандидоз и др. Воспалительные заболевания женских половых органов, по данным ВОЗ, занимают второе место после ОРВИ.

Лекарственные растения могут использоваться в составе фоновой терапии, основной терапии, восстановительной и профилактической терапии. Фитопрепараты назначаются не только как симптоматические средства, но и с учетом патогенеза заболевания и саногенеза пациентки. Не следует противопоставлять препараты, созданные на основе химического синтеза, средствам растительного происхождения: для гинекологической практики важно оптимальное использование тех и других лекарственных средств.

Следовательно, фитотерапия расширяет возможности врача, прежде всего, в лечении хронических воспалительных заболеваний женских половых органов, когда требуется длительное воздействие, а применение химио-терапевтических средств недостаточно эффективно или нежелательно.

На территории бывшего СССР распространено около 20 тысяч видов растений. Научная медицина разрешает к применению около 400 видов, что составляет около 3 % потенциала, состав не­которых из них невозможно воспроизвести с по­мощью современных технологий. А из произрастающих в Казахстане более 6000 видов растений, лишь 130 используются в официнальной медицине.

В данной статье мы приводим сведения по 42 казахстанским видам лекарственных растений, используемых в гинекологии.