Ингибиторами принято называть вещества, вызывающие частичное или полное торможение реакций, катализируемых ферментами. Поскольку ферменты являются белками, любые агенты, вызывающие денатурацию белка (нагревание, кислоты, щелочи, соли тяжелых металлов) приводят к инактивации фермента. Однако, подобное инактивирование относительно неспецифично. Оно не связано с механизмом действия ферментов. Гораздо большую группу составляют так называемые специфические ингибиторы, которые оказывают свое действие на один какой-либо фермент или на группу родственных ферментов.
Ингибиторы нашли широкое применение в этимологии при исследовании природы множественных форм ферментов и изоферментов, отличающихся не столько электрофоретической подвижностью, сколько различием реакций на один и тот же ингибитор.
При помощи ингибиторов, избирательно включающихся в отдельные стадии многоступенчатого метаболического процесса, могут быть точно установлены последовательность химических реакций и природа участвующих ферментов. В частности, этим путем при применении йодацетата, фторида и др. ингибиторов был расшифрован гликолитический путь окислительно-восстановительных превращений глюкозы до молочной кислоты в мышечной ткани, насчитывающий 11 стадий с участием 11 ферментов и 10 промежуточных метаболитов. На ингибировании ферментов основан механизм действия многих токсинов и ядов на организм. Так, известно, что при отравлениях синильной кислотой смерть наступает вследствие полного торможения дыхательных ферментов (цитохромоксидазы), в особенности клеток мозга. Токсическое влияние на организм человека и животных некоторых инсектицидов обусловлено торможением активности холинэстеразы - фермента, играющего первостепенную роль в деятельности нервной системы. Рациональная химиотерапия - осознанное применение лекарственных препаратов в медицине. Она должна опираться на точное знание механизма их действия на биосинтез ферментов. Иногда метод лечения болезней человека включает применение избирательных ингибиторов. Так, ингибитор трипсина и хемотрипсина, трасилол широко используется при лечении острого панкреатита. Избирательное ингибирование ферментов некоторых природных и синтетических соединений (так называемых антиметаболитов) в настоящее время служат основой для разработки эффективных методов синтеза химиотерапевтических препаратов. Обычно различают обратимое и необратимое ингибирование. Если молекула ингибитора вызывает стойкие изменения или модификацию функциональных
групп фермента, то такой тип ингибирования называется необратимым.
Чаще, однако, имеет место обратимое ингибирование, поддающееся количественному изучению на основе уравнения Михаэлиса-Ментен. Обратимое ингибирование в свою очередь разделяют на конкурентное и неконкурентное, в зависимости от того, удается или не удается преодолеть торможение ферментативной реакции путем увеличения концентрации субстрата. Во втором случае повышение концентрации субстрата не изменяет степень ингибирования фермента.
Конкурентное ингибирование может быть вызвано веществами, имеющими структуру, похожую на субстрат, но немного отличающуюся. Так, торможение активности сукцинатдегидрогеназы малоновой кислотой, является примером такого ингибирования. Этот фермент катализирует окисление путем дегидрирования янтарной кислоты в фумаровую в соответствии со схемой (рис. 12).
Если в среду добавить малоновую кислоту (ингибитор), то в силу структурного сходства ее с истинным субстратом - янтарной кислотой (наличие двух таких же ионизированных карбоксильных групп), она будет реагировать с активным центром с образованием фермент-ингибиторного комплекса (рис. 13). Однако при этом перенос водорода от малоната не происходит. Так как структуры субстрата - янтарной кислоты и ингибитора - малоната все же несколько сближаются, они конкурируют за связывание с активным центром, и степень торможения будет определяться соотношением концентраций малоната и сукцината, а не абсолютной концентрацией ингибитора.
Метод конкурентного торможения нашел широкое применение в медицинской практике. Известно, например, что для лечения некоторых инфекционных заболеваний, вызываемых бактериями, применяют сульфаниламидные препараты. Оказалось, что эти препараты имеют структурное сходство с параамино-бензойной кислотой, которую бактериальная клетка использует для синтеза фолиевой кислоты, являющейся составной частью ферментов бактерий. Благодаря этому структурному сходству сульфаниламид, например, блокирует действие фермента путем вытеснения парааминобензойной кислоты из комплекса с ферментом, синтезирующим фолиевую кислоту, что ведет к торможению роста бактерий.
-оос
D
СИ
-оос
малонат
Рис. 13. Блокирование активного центра фермента янтарной кислотой образованием фермент-ингибиторного комплекса.
Неконкурентные ингибиторы обычно не связываются с активным центром фермента, т. к. не имеют структурного сходства с субстратами и часто связываются в другом месте с ферментом. При данном типе ингибирования, благодаря образованию стабильной ковалентной связи, фермент часто подвергается полной инактивации и тогда торможение становится необратимым. Примером неконкурентного ингибирования (инактивации) является действие йодацетата, синильной кислоты и других веществ, заключающееся в связывании и выключении функциональных групп или ионов металлов в молекуле фермента: ингибитор образует ковалентную связь с ферментом и не может быть удален диализом и другими методами.
3. Лабораторные работы
3.1. Сравнительное действие неорганических и биологических катализаторов
3.1.1. Кислотный гидролиз крахмала
Поместите в пробирку 10 капель 0,1% раствор крахмального клейстера. Добавьте 2 капли раствора H2S04, с концентрацией С — 2 моль/л и поставьте пробирку на водяную баню, сделав предварительную метку на пробирке. Через 20 минут обратите внимание на то, что мутный раствор клейстера перестал опалесцировать (стал прозрачным). С помощью пипетки нанесите 1 каплю гидролизата на предметное стекло и добавьте 1 каплю раствора йода в йодистом калии.
Для получения такого раствора 1 каплю раствора йода в йодистом калии поместите в отдельную пробирку, и долейте ее до верха водой, чтобы получился светло-желтый раствор. Сохраните его для последующих опытов. Отсутствие сине-фиолетового окрашивания от очень разбавленного раствора йода укажет на отсутствие крахмала.
Убедившись в отсутствии крахмала, добавьте к продукту гидролиза, оставшемуся в пробирке, избыток щелочи - 8 капель раствора NaOH с концентрацией С = 2 моль/л для создания щелочной среды и 1 каплю раствора CuS04 с концентрацией С = 0,2 моль/л. Образуется синее окрашивание. Нагрейте верхнюю часть пробирки до кипения, синий цвет переходит в желтовато-красный (проба Троммера положительная). Это указывает на то, что произошла реакция гидролиза крахмала под действием неорганического катализатора - серной кислоты.
3.1.2. Биологический гидролиз крахмала
В пробирку собрать 1 мл слюны (ротовую полость предварительно ополоснуть чистой водой). Разбавить ее 4 мл дистиллированной воды и внести 1 мл крахмала. Тщательно перемешать и поставить пробирку на водяную баню с t = 40-45°С на 15-20 минут. Далее в пробирку внести 2 мл фелинговой жидкости (по 1 мл Фелинг 1 и Фелинг 2) и нагреть до кипения.
Объяснить механизм процесса и положительный результат фелинговой пробы. В выводе сопоставить результаты работ 3.1.1. и 3.1.2.
(С6Н10О5)п (крахмал) + пН20 —> пС6Н1206 (глюкоза).
Сделайте общий вывод по обоим опытам: сравните действие неорганических и биологических катализаторов.
3.2. Термолабильность ферментов
Слюну разводят в 5 раз (к 1 мл собранной слюны добавляют 4 мл дистиллированной воды и перемешивают). В чистую пробирку отливают 2-3 мл разведенной слюны и кипятят ее в течение 5-8 минут, после чего охлаждают.
В 3 пробирки наливают по 10 капель 1% раствора крахмала. В 1 пробирку добавляют 10 капель слюны, разведенной в 5 раз, во вторую - 10 капель прокипяченной слюны, в 3 пробирку - 10 капель дистиллированной воды (в качестве контроля).
Все пробирки нумеруют и помещают в термостат или водяную баню с t=38°C на 10 минут. После этого содержимое пробирки делят на 2 части и проделывают качественные реакции на крахмал (с йодом) и на продукты расщепления (реакция Троммера).
Реакция на крахмал. К 5 каплям исследуемого раствора приливают 1 каплю раствора йода в йодистом калии. В присутствии крахмала появляется синее окрашивание.
Реакция Троммера. К 5 каплям исследуемой жидкости прибавляют 5 капель 10% раствора гидроксида натрия и 5 капель 1% раствора сульфата меди (II) (избегать ее избытка!) и нагревают. В присутствии глюкозы и мальтозы выпадает желтый осадок гидроксида меди (I) или красный осадок оксида меди (I).
Полученные данные занести в таблицу, и сделать вывод: какая температура является оптимальной для амилазы слюны.
Таблица № 5
№
|
Субстрат
|
Фермент
|
Температура
|
Реакция на крахмал (цвет)
|
Реакция Троммера
|
Выводы
|
Приложение
Реакция Троммера: (реакция медного зеркала) - качественная реакция на альдегидную группу. Ее дают моносахариды, дисахариды, имеющие альдегидную группу. Эти продукты образуются при действии амилазы на крахмал.
Уравнение реакции: СН2ОН-(СНОН)4- СНО+Си(ОН)2^ СН2ОН- (СНОН)4- СООН+CuOHl +н2о Гидроксид меди (I) СиОН - осадок желтого цвета.
2СиОН —> Си20 (кирпично-красного цвета) + Н20. Недостаток реакции Троммера: нельзя добавлять избыток гидоксида меди (II), так как в этом случае при нагревании может образоваться оксид меди (II) черного цвета, который затушует кирпично-красное окрашивание: Cu(OH)2 -> CuOl (черного цвета) + Н20.
3.3. Специфичность ферментов
В две пробирки приливают по пять капель слюны, разведенной в пять раз (приготовление см. в работе 3.2.). В первую пробирку добавляют десять капель 1%-ного раствора сахарозы, во вторую пробирку десять капель крахмала. Обе пробирки помещают на десять минут в термостат или водяную баню при температуре 38 С, после чего в обеих пробирках проделывают реакцию Троммера на углеводы (см. предыдущую работу). Результаты опыта заносят в таблицу, делают вывод о специфичности амилазы слюны.
4. Контрольные задания и вопросы
-
Дайте понятия катализа, видов катализа, теорий катализа.
-
Приведите строение ферментов, дайте понятие "активных центров" биокатализаторов.
-
Укажите особенности ферментативного катализа. Изложите гипотезу Фишера.
-
Что подразумевается под удельной активностью фермента? Приведите единицу активности.
-
От каких факторов зависит скорость ферментативных реакций?
-
Напишите уравнения Михаэлиса-Ментен и Бриггса-Холдейна.
-
За счет чего с термодинамической точки зрения ферменты ускоряют процесс?
-
Как проявляется термолабильность ферментов?
-
Какова зависимость активности ферментов от рН среды? Как выглядит графическая кривая этой зависимости?
-
Укажите роль активации и ингибирования в ферментативных процессах?
-
Как используется метод конкурентного торможения в медицинской практике?
-
Напишите уравнения реакций действия каталазы на субстрат Н202 в крови по стадиям. Укажите стадию, определяющую порядок реакции. Запишите кинетическое уравнение.
VI. Лабораторное занятие № 6 1. Задание к занятию № 6 Тема: Коллигативные свойства растворов
Цель: Сформировать у студентов: понятия взаимосвязи и возможных отли
чий в коллигативных свойствах, зависящих от числа кинетических единиц в растворе; представления о законах, описывающих эти явления (Рауля, Вант-Гоффа, Сеченова), с необходимостью их использования в биологических процессах и медико-биологических исследованиях.
2. Основные вопросы темы:
2.1. Коллигативные свойства растворов слабых электролитов.
-
Закон Рауля и его следствия.
-
Диффузия, осмос, осмотическое давление, законы Фика и Вант-Гоффа.
2.2. Элементы теории растворов электролитов.
-
Закон разведения Оствальда.
-
Изотонический коэффициент. Теория Дебая-Хюккеля. Активность, коэффициент активности. Ионная сила.
2.3. Электролиты в организме. Осмотические свойства растворов электролитов.
-
Изоосмия, осмолярность, осмоляльность.
-
Роль осмоса в биологических системах. Плазмолиз и деплазмолиз. Контроль на входе: фронтальный опрос (устно), решение задач, тестовый (письменно).
3. Лабораторные работы:
-
Наблюдение явления осмоса (демонстрационная работа).
-
Рост искусственной клетки Траубе.
-
Гемолиз и плазмолиз эритроцитов.
3.4. Определение изотонического коэффициента и кажущейся степени
диссоциации натрия хлорида криоскопическим методом.
Контроль на выходе: показать преподавателю на выходе результаты лабораторных работ, уметь их объяснить.
4. Библиографический список:
1. Общая химия. Биофизическая химия. Химия биогенных элементов: Учеб. для мед. спец. вузов. / Ю. А. Ершов, В. А. Попков, А. С. Берлянд и др. Под ред. Ю. А. Ершова-М.: Высшая школа, 2003. Гл. 2, 3, с. 61-95.
2. Основные теоретические положения 2.1. Основные законы и соотношения теории растворов
Основные законы и соотношения теории растворов строго соблюдаются лишь для модельных систем, называемых идеальными растворами.
Идеальными называются растворы, образование которых не сопровождается ни тепловыми, ни объемными изменениями системы (DH = 0, DV = 0). Свойства идеальных растворов не зависят от природы растворителя и растворенного вещества, а зависят только от количества частиц. При этом не имеют места какие-либо взаимодействия между частицами растворенного вещества и растворителя.
Реальные растворы не являются идеальными и в своем поведении могут лишь приближаться к модели идеального раствора, например, разбавленные растворы неэлекролитов. В таких растворах концентрация растворенного вещества чрезвычайно мала, и молекулы находятся на относительно большом расстоянии, и их взаимное влияние можно исключить. Только для таких, очень разбавленных растворов, удалось вывести количественное соотношение между свойствами растворов и их концентрацией.
Свойства растворов, зависящие от концентрации кинетически самостоятельных единиц и независящие от их природы, называют коллигативными.
Основным из них является понижение давления насыщенного пара растворителя над раствором, описываемое законом Рауля. Остальные свойства, а именно: повышение температуры кипения и понижение температуры замерзания растворов, явления диффузии, осмоса и осмотического давления вытекают из него как прямое следствие.
2.2. Диффузия. Законы Фика и Вант-Гоффа
Самопроизвольный процесс переноса вещества, в результате которого устанавливается равновесие и распределение концентраций вследствие беспорядочного теплового движения молекул, атомов, ионов в газах, жидкостях или твердых телах, называется диффузией.
С точки зрения термодинамики причиной этого процесса является перемещение вещества от более высокого химического потенциала к низкому, т. е. mfcj) >m(c2), при с^с^
При условии равенства концентраций во всех точках пространства явление диффузии прекращается. При этом химические потенциалы становятся одинако
выми.
Диффузия играет важную роль в биологических системах. Всякая живая клетка окружена мембраной, которая служит для защиты и регуляции внутриклеточной среды. Вещества проходят через мембраны по двум основным механизмам: путем обычной диффузии, не связанной с затратой химической энергии -пассивный транспорт и за счет энергетически активированного переноса на основе гидролиза АТФ или переноса электронов по дыхательной цепи митохондрий, что подразумевает активный транспорт.
В пассивном транспорте различают: а) простую диффузию; б) перенос через поры, каналы; в) транспорт с помощью переносчиков - на основе диффузии переносчика вместе с веществом в мембране, т. е. эстафетной передаче (временная цепочка поперек мембраны).
Для описания диффузии веществ через клеточные мембраны пользуются не математическим выражением закона Фика: An/At = -DS• (Ас/Ах), а более простым уравнением (т. к. концентрационный градиент (Ас/Ах) клеточной мембраны определить трудно):
Am/At = -PS(CrC2), [1] где С и С2 - концентрации по разные стороны мембраны; Р - коэффициент проницаемости, зависящий от свойств мембраны.
Диффузия может происходить также, если на границе раствора и чистого растворителя (или двух растворов различной концентрации) поместить полупроницаемую мембрану, способную пропускать только молекулы растворителя. Свойствами полупроницаемых мембран обладают многие природные пленки (стенки кишечника, протоплазма и др.)
Явление преимущественно одностороннего проникновения растворителя (диффузию) через полупроницаемую мембрану из растворителя в раствор или из раствора с меньшей концентрацией в раствор с большей концентрацией называется осмосом.
С точки зрения термодинамики движущей силой осмоса является стремление системы к выравниванию концентраций; так как при этом энтропия системы возрастает (DS>0), энергия Гиббса системы (DG) соответственно уменьшается, химические потенциалы выравниваются. Поэтому осмос можно представить как направленный самопроизвольный проход молекул растворителя через мембрану, разделяющую растворы с различными значениями химического потенциала растворителя.
Осмос можно наблюдать в специальных приборах - осмометрах (рис. 14, с. 68). Основной его деталью является осмометрическая ячейка (1), отделенная от сосуда (4) с чистым растворителем полупроницаемой мембраной (2), пропускающей только молекулы растворителя. Ячейку с концентрированным раствором
погружают в сосуд с растворителем - менее концентрированным раствором. В начальный момент времени химический потенциал воды во внутреннем сосуде осмометра меньше химического потенциала воды во внешнем сосуде. По истечении некоторого времени часть воды перешла во внутренний сосуд; разность химических потенциалов воды в системах, разделенных мембраной, уменьшилась. Вода проникает через перегородку, оказывая на нее определенное давление - осмотическое давление. Процесс переноса молекул воды будет продолжаться до тех пор, пока гидростатическое давление не уравновесит осмотическое. Осмотическое давление можно определить, измерив гидростатическое давление столбика воды в трубке (3):
p = h*r,
где р - осмотическое давление; h - высота подъема жидкости; г - плотность раствора.
Таким образом, осмотическое давление численно равно силе, приходящейся на единицу поверхности, которую нужно приложить к поверхности полупроницаемой мембраны, чтобы предотвратить проникновение молекул воды в раствор с меньшим ее химическим потенциалом.
Несмотря на различный механизм возникновения осмотического и газового давления, Вант-Гофф установил, что осмотическое давление сильно разбавленных растворов подчиняется законам идеальных газов, причем тем точнее, чем ниже концентрация растворенного вещества.
Закон Вант-Гоффа гласит: "Осмотическое давление разбавленного раствора равно давлению, которое проявляло бы растворенное вещество, если бы оно было газообразным и занимало объем, равный объему раствора". Уравнение для описания осмотического давления для растворов неэлектролитов можно записать так:
p = (m/MV)-RT = C-RT, [2]
где р - осмотическое давление, кПа;
С - молярная концентрация, моль/л;
R - универсальная газовая постоянная, равная 8,31 (кПа-л)/(моль-К); Т - абсолютная температура, К.
Таким образом, для осмотического давления в истинных растворах низкомолекулярных веществ имеет значение только число растворенных частиц, а не их масса, размеры и форма.
2.3. Изотонический коэффициент. Теория Дебая-Хюккеля. Активность. Коэффициент активности. Ионная сила
Опыт показал, что у растворов, проводящих электрический ток (электролиты), более высокое, чем по закону Вант-Гоффа, осмотическое давление, они кипят при более высокой температуре и замерзают при более низкой, чем это следует из закона Рауля. Существенным является тот факт, что концентрация кинетически самостоятельных частиц в растворах электролитов всегда больше, чем это следует из аналитической концентрации. С тем, чтобы свойства растворов электролитов удовлетворительно описывались уравнениями, выражающими следствие из закона Рауля, Вант-Гоффом был введен поправочный эмпирический коэффициент, называемый сейчас изотоническим или коэффициентом Вант-Гоффа (i):
p=iCRT, [3]
Изотонический коэффициент находят как отношение между наблюдаемыми для электролитов (опытными) и вычисляемыми для неэлектролитов (расчетными) значениями следующих величин:
i = p /р = DT /DT = DT /DT [4]
опыт. расч. зам.опыт. зам.расч. кип.опыт. кип.расч. L J
Коэффициент Вант-Гоффа учитывает ионизацию веществ и взаимодействие ионов и молекул в растворе. Значение i для раствора данного электролита увеличивается по мере разбавления, стремясь в пределе к целому значению, равному числу ионов, возникающих при диссоциации структурной единицы электролита.
Для неэлектролитов, растворенных в воде, i равно 1 (i =1).
Для сильных электролитов i=v, где v число ионов, которое образуется при диссоциации.
Например, для раствора натрия хлорида i->2, так как NaCl^Na++Cl~ и
2+
v=2; изотонический коэффициент кальция хлорида i -> 3, так как СаС12^ Са +2С Г и v=3. Если соль подвергается гидролизу, то часть ионов взаимодействует с водой и i^v. В этом случае неободимо учитывать степень гидролиза соли.
В растворах слабых электролитов кинетически активными частицами, наряду с ионами разной природы, являются и молекулы, не подлежащие ионизации. В этом случае нужно учитывать степень ионизации (а) электролита и ступенчатость процесса ионизации.
Для слабых электролитов, ионизирующих в одну ступень, связь изотонического коэффициента с а выражается уравнением:
i = l+a(n-l). [5]
Итак, несмотря на практически полную ионизацию, опытные значения осмотического давления, понижения температуры замерзания и повышения температуры кипения у растворов сильных электролитов меньше, чем значение величин, полученные для 100% ионизации.
В 1923 году Дебай и Хюккель выдвинули теорию, согласно которой в растворах сильных электролитов каждый ион окружен со всех сторон ионами противоположенного знака, вследствие чего движение ионов ограничено. Ионы сильного электролита в растворе взаимодействуют между собой благодаря наличию значительных электростатических сил, в результате чего ионы одного знака образуют вокруг иона другого знака так называемую ионную атмосферу. Необходимо также учитывать сольватацию ионов. Ионная атмосфера и сольватная оболочка замедляют движение ионов в растворе и являются причиной кажущейся неполной ионизации. Кроме того, в растворах сильных электролитов при высоких концентрациях может происходить ассоциация ионов. Для учета этих влияний состав растворов электролитов следует характеризовать не аналитической концентрацией, а эффективной концентрацией, называемой активностью (Льюис, 1907).
Между активностью и аналитической концентацией ионов существует связь:
a = f-C, [6]
где f - коэффициент активности, зависящий от концентрации (обычно f < 1); а - активность, моль/л; С - концентрация электролита, моль/л.
В разбавленных растворах сильных электролитов f = 1, тогда а = с.
Активность иона зависит от напряженности существующего в растворе электрического поля, которое количественно характеризуется ионной силой раствора I:
1 = 0,5£С-22., [7]
где с{ - молярная концентрация иона в растворе, моль/л; Z - заряд иона.
Ионная сила - величина аддитивная: каждый электролит вносит свой вклад в величину I независимо от других. Для разбавленных растворов коэффициент активности можно рассчитать по уравнению Дебая-Хюккеля:
\gf=-0,5z2^I [8]
Поскольку в растворах слабых электролитов ионная сила низкая, для них, как и для разбавленных расторов сильных электролитов, а^с.
Все биологические жидкости представляют собой водные растворы с большим значением ионной силы, которая создается сильными электролитами.
Достарыңызбен бөлісу: |