Учебно-методическое пособие к лабораторным работам по общей химии ставрополь 2005 (07. 07)



бет6/12
Дата13.06.2016
өлшемі14.35 Mb.
#131716
түріУчебно-методическое пособие
1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   12

Ингибиторами принято называть вещества, вызывающие частичное или полное торможение реакций, катализируемых ферментами. Поскольку ферменты являются белками, любые агенты, вызывающие денатурацию белка (нагревание, кислоты, щелочи, соли тяжелых металлов) приводят к инактивации фермента. Однако, подобное инактивирование относительно неспецифично. Оно не связано с механизмом действия ферментов. Гораздо большую группу составляют так называемые специфические ингибиторы, которые оказывают свое действие на один какой-либо фермент или на группу родственных ферментов.

Ингибиторы нашли широкое применение в этимологии при исследовании природы множественных форм ферментов и изоферментов, отличающихся не столько электрофоретической подвижностью, сколько различием реакций на один и тот же ингибитор.

При помощи ингибиторов, избирательно включающихся в отдельные стадии многоступенчатого метаболического процесса, могут быть точно установлены последовательность химических реакций и природа участвующих ферментов. В частности, этим путем при применении йодацетата, фторида и др. ингибиторов был расшифрован гликолитический путь окислительно-восстановительных превращений глюкозы до молочной кислоты в мышечной ткани, насчитывающий 11 стадий с участием 11 ферментов и 10 промежуточных метаболитов. На ингибировании ферментов основан механизм действия многих токсинов и ядов на организм. Так, известно, что при отравлениях синильной кислотой смерть наступает вследствие полного торможения дыхательных ферментов (цитохромоксидазы), в особенности клеток мозга. Токсическое влияние на организм человека и животных некоторых инсектицидов обусловлено торможением активности холинэстеразы - фермента, играющего первостепенную роль в деятельности нервной системы. Рациональная химиотерапия - осознанное применение лекарственных препаратов в медицине. Она должна опираться на точное знание механизма их действия на биосинтез ферментов. Иногда метод лечения болезней человека включает применение избирательных ингибиторов. Так, ингибитор трипсина и хемотрипсина, трасилол широко используется при лечении острого панкреатита. Избирательное ингибирование ферментов некоторых природных и синтетических соединений (так называемых антиметаболитов) в настоящее время служат основой для разработки эффективных методов синтеза химиотерапевтических препаратов. Обычно различают обратимое и необратимое ингибирование. Если молекула ингибитора вызывает стойкие изменения или модификацию функциональных

групп фермента, то такой тип ингибирования называется необратимым.

Чаще, однако, имеет место обратимое ингибирование, поддающееся коли­чественному изучению на основе уравнения Михаэлиса-Ментен. Обратимое ин­гибирование в свою очередь разделяют на конкурентное и неконкурентное, в зависимости от того, удается или не удается преодолеть торможение фермента­тивной реакции путем увеличения концентрации субстрата. Во втором случае повышение концентрации субстрата не изменяет степень ингибирования фер­мента.

Конкурентное ингибирование может быть вызвано веществами, имеющи­ми структуру, похожую на субстрат, но немного отличающуюся. Так, торможе­ние активности сукцинатдегидрогеназы малоновой кислотой, является приме­ром такого ингибирования. Этот фермент катализирует окисление путем дегид­рирования янтарной кислоты в фумаровую в соответствии со схемой (рис. 12).

Если в среду добавить малоновую кислоту (ингибитор), то в силу структурного сходства ее с истинным субстратом - янтарной кислотой (наличие двух таких же ионизированных карбоксильных групп), она будет реагировать с активным центром с образованием фермент-ингибиторного комплекса (рис. 13). Однако при этом перенос водорода от малоната не происходит. Так как структуры субстрата - янтарной кислоты и ингибитора - малоната все же несколько сближаются, они конкурируют за связывание с активным центром, и степень торможения будет определяться соотношением концентраций малоната и сукцината, а не абсолютной концентрацией ингибитора.

Метод конкурентного торможения нашел широкое применение в меди­цинской практике. Известно, например, что для лечения некоторых инфекционных заболеваний, вызываемых бактериями, применяют сульфаниламидные препа­раты. Оказалось, что эти препараты имеют структурное сходство с параамино-бензойной кислотой, которую бактериальная клетка использует для синтеза фолиевой кислоты, являющейся составной частью ферментов бактерий. Благодаря этому структурному сходству сульфаниламид, например, блокирует действие фермента путем вытеснения парааминобензойной кислоты из комплекса с ферментом, синтезирующим фолиевую кислоту, что ведет к торможению роста бактерий.

-оос

D

СИ

-оос



малонат

Рис. 13. Блокирование активного центра фермента янтарной кислотой образованием фермент-ингибиторного комплекса.

Неконкурентные ингибиторы обычно не связываются с активным центром фермента, т. к. не имеют структурного сходства с субстратами и часто связываются в другом месте с ферментом. При данном типе ингибирования, благодаря образованию стабильной ковалентной связи, фермент часто подвергается полной инактивации и тогда торможение становится необратимым. Примером неконкурентного ингибирования (инактивации) является действие йодацетата, синильной кислоты и других веществ, заключающееся в связывании и выключении функциональных групп или ионов металлов в молекуле фермента: ингибитор образует ковалентную связь с ферментом и не может быть удален диализом и другими методами.

3. Лабораторные работы

3.1. Сравнительное действие неорганических и биологических катализаторов

3.1.1. Кислотный гидролиз крахмала

Поместите в пробирку 10 капель 0,1% раствор крахмального клейстера. Добавьте 2 капли раствора H2S04, с концентрацией С 2 моль/л и поставьте пробирку на водяную баню, сделав предварительную метку на пробирке. Через 20 минут обратите внимание на то, что мутный раствор клейстера перестал опалесцировать (стал прозрачным). С помощью пипетки нанесите 1 каплю гидролизата на предметное стекло и добавьте 1 каплю раствора йода в йодистом калии.

Для получения такого раствора 1 каплю раствора йода в йодистом калии поместите в отдельную пробирку, и долейте ее до верха водой, чтобы получился светло-желтый раствор. Сохраните его для последующих опытов. Отсутствие сине-фиолетового окрашивания от очень разбавленного раствора йода укажет на отсутствие крахмала.

Убедившись в отсутствии крахмала, добавьте к продукту гидролиза, оставшемуся в пробирке, избыток щелочи - 8 капель раствора NaOH с концентрацией С = 2 моль/л для создания щелочной среды и 1 каплю раствора CuS04 с концентрацией С = 0,2 моль/л. Образуется синее окрашивание. Нагрейте верхнюю часть пробирки до кипения, синий цвет переходит в желтовато-красный (проба Троммера положительная). Это указывает на то, что произошла реакция гидролиза крахмала под действием неорганического катализатора - серной кислоты.



3.1.2. Биологический гидролиз крахмала

В пробирку собрать 1 мл слюны (ротовую полость предварительно ополоснуть чистой водой). Разбавить ее 4 мл дистиллированной воды и внести 1 мл крахмала. Тщательно перемешать и поставить пробирку на водяную баню с t = 40-45°С на 15-20 минут. Далее в пробирку внести 2 мл фелинговой жидкости (по 1 мл Фелинг 1 и Фелинг 2) и нагреть до кипения.

Объяснить механизм процесса и положительный результат фелинговой пробы. В выводе сопоставить результаты работ 3.1.1. и 3.1.2.

6Н10О5)п (крахмал) + пН20 —> пС6Н1206 (глюкоза).

Сделайте общий вывод по обоим опытам: сравните действие неорганических и биологических катализаторов.

3.2. Термолабильность ферментов

Слюну разводят в 5 раз (к 1 мл собранной слюны добавляют 4 мл дистиллированной воды и перемешивают). В чистую пробирку отливают 2-3 мл разведенной слюны и кипятят ее в течение 5-8 минут, после чего охлаждают.

В 3 пробирки наливают по 10 капель 1% раствора крахмала. В 1 пробирку добавляют 10 капель слюны, разведенной в 5 раз, во вторую - 10 капель прокипяченной слюны, в 3 пробирку - 10 капель дистиллированной воды (в качестве контроля).

Все пробирки нумеруют и помещают в термостат или водяную баню с t=38°C на 10 минут. После этого содержимое пробирки делят на 2 части и проделывают качественные реакции на крахмал (с йодом) и на продукты расщепления (реакция Троммера).



Реакция на крахмал. К 5 каплям исследуемого раствора приливают 1 каплю раствора йода в йодистом калии. В присутствии крахмала появляется синее окрашивание.

Реакция Троммера. К 5 каплям исследуемой жидкости прибавляют 5 капель 10% раствора гидроксида натрия и 5 капель 1% раствора сульфата меди (II) (избегать ее избытка!) и нагревают. В присутствии глюкозы и мальтозы выпадает желтый осадок гидроксида меди (I) или красный осадок оксида меди (I).

Полученные данные занести в таблицу, и сделать вывод: какая температура является оптимальной для амилазы слюны.

Таблица № 5



Субстрат

Фермент

Темпе­ратура

Реакция на крахмал (цвет)

Реакция Троммера

Выводы

Приложение

Реакция Троммера: (реакция медного зеркала) - качественная реакция на альдегидную группу. Ее дают моносахариды, дисахариды, имеющие альдегидную группу. Эти продукты образуются при действии амилазы на крахмал.

Уравнение реакции: СН2ОН-(СНОН)4- СНО+Си(ОН)2^ СН2ОН- (СНОН)4- СООН+CuOHl +н2о Гидроксид меди (I) СиОН - осадок желтого цвета.

2СиОН —> Си20 (кирпично-красного цвета) + Н20. Недостаток реакции Троммера: нельзя добавлять избыток гидоксида меди (II), так как в этом случае при нагревании может образоваться оксид меди (II) черного цвета, который затушует кирпично-красное окрашивание: Cu(OH)2 -> CuOl (черного цвета) + Н20.

3.3. Специфичность ферментов

В две пробирки приливают по пять капель слюны, разведенной в пять раз (приготовление см. в работе 3.2.). В первую пробирку добавляют десять капель 1%-ного раствора сахарозы, во вторую пробирку десять капель крахмала. Обе пробирки помещают на десять минут в термостат или водяную баню при темпе­ратуре 38 С, после чего в обеих пробирках проделывают реакцию Троммера на углеводы (см. предыдущую работу). Результаты опыта заносят в таблицу, делают вывод о специфичности амилазы слюны.



4. Контрольные задания и вопросы

  1. Дайте понятия катализа, видов катализа, теорий катализа.

  2. Приведите строение ферментов, дайте понятие "активных центров" био­катализаторов.

  3. Укажите особенности ферментативного катализа. Изложите гипотезу Фи­шера.

  4. Что подразумевается под удельной активностью фермента? Приведите единицу активности.

  5. От каких факторов зависит скорость ферментативных реакций?

  6. Напишите уравнения Михаэлиса-Ментен и Бриггса-Холдейна.

  7. За счет чего с термодинамической точки зрения ферменты ускоряют про­цесс?

  8. Как проявляется термолабильность ферментов?

  9. Какова зависимость активности ферментов от рН среды? Как выглядит графическая кривая этой зависимости?




  1. Укажите роль активации и ингибирования в ферментативных процессах?

  2. Как используется метод конкурентного торможения в медицинской прак­тике?

  3. Напишите уравнения реакций действия каталазы на субстрат Н202 в кро­ви по стадиям. Укажите стадию, определяющую порядок реакции. Запишите ки­нетическое уравнение.

VI. Лабораторное занятие № 6 1. Задание к занятию № 6 Тема: Коллигативные свойства растворов

Цель: Сформировать у студентов: понятия взаимосвязи и возможных отли­

чий в коллигативных свойствах, зависящих от числа кинетических единиц в растворе; представления о законах, описывающих эти явления (Рауля, Вант-Гоффа, Сеченова), с необходимостью их использования в биологических про­цессах и медико-биологических исследованиях.



2. Основные вопросы темы:

2.1. Коллигативные свойства растворов слабых электролитов.



  1. Закон Рауля и его следствия.

  2. Диффузия, осмос, осмотическое давление, законы Фика и Вант-Гоффа.

2.2. Элементы теории растворов электролитов.

  1. Закон разведения Оствальда.

  2. Изотонический коэффициент. Теория Дебая-Хюккеля. Активность, коэффициент активности. Ионная сила.

2.3. Электролиты в организме. Осмотические свойства растворов электролитов.

  1. Изоосмия, осмолярность, осмоляльность.

  2. Роль осмоса в биологических системах. Плазмолиз и деплазмолиз. Контроль на входе: фронтальный опрос (устно), решение задач, тестовый (письменно).

3. Лабораторные работы:

  1. Наблюдение явления осмоса (демонстрационная работа).

  2. Рост искусственной клетки Траубе.

  3. Гемолиз и плазмолиз эритроцитов.

3.4. Определение изотонического коэффициента и кажущейся степени
диссоциации натрия хлорида криоскопическим методом.

Контроль на выходе: показать преподавателю на выходе результаты лабораторных работ, уметь их объяснить.

4. Библиографический список:

1. Общая химия. Биофизическая химия. Химия биогенных элементов: Учеб. для мед. спец. вузов. / Ю. А. Ершов, В. А. Попков, А. С. Берлянд и др. Под ред. Ю. А. Ершова-М.: Высшая школа, 2003. Гл. 2, 3, с. 61-95.



2. Основные теоретические положения 2.1. Основные законы и соотношения теории растворов

Основные законы и соотношения теории растворов строго соблюдаются лишь для модельных систем, называемых идеальными растворами.



Идеальными называются растворы, образование которых не сопровожда­ется ни тепловыми, ни объемными изменениями системы (DH = 0, DV = 0). Свой­ства идеальных растворов не зависят от природы растворителя и растворенного вещества, а зависят только от количества частиц. При этом не имеют места какие-либо взаимодействия между частицами растворенного вещества и растворителя.

Реальные растворы не являются идеальными и в своем поведении могут лишь приближаться к модели идеального раствора, например, разбавленные ра­створы неэлекролитов. В таких растворах концентрация растворенного вещества чрезвычайно мала, и молекулы находятся на относительно большом расстоянии, и их взаимное влияние можно исключить. Только для таких, очень разбавленных растворов, удалось вывести количественное соотношение между свойствами растворов и их концентрацией.

Свойства растворов, зависящие от концентрации кинетически самостоя­тельных единиц и независящие от их природы, называют коллигативными.

Основным из них является понижение давления насыщенного пара раство­рителя над раствором, описываемое законом Рауля. Остальные свойства, а имен­но: повышение температуры кипения и понижение температуры замерзания ра­створов, явления диффузии, осмоса и осмотического давления вытекают из него как прямое следствие.



2.2. Диффузия. Законы Фика и Вант-Гоффа

Самопроизвольный процесс переноса вещества, в результате которого ус­танавливается равновесие и распределение концентраций вследствие беспоря­дочного теплового движения молекул, атомов, ионов в газах, жидкостях или твер­дых телах, называется диффузией.

С точки зрения термодинамики причиной этого процесса является переме­щение вещества от более высокого химического потенциала к низкому, т. е. mfcj) >m(c2), при с^с^

При условии равенства концентраций во всех точках пространства явление диффузии прекращается. При этом химические потенциалы становятся одинако­

выми.

Диффузия играет важную роль в биологических системах. Всякая живая клетка окружена мембраной, которая служит для защиты и регуляции внутрикле­точной среды. Вещества проходят через мембраны по двум основным механиз­мам: путем обычной диффузии, не связанной с затратой химической энергии -пассивный транспорт и за счет энергетически активированного переноса на ос­нове гидролиза АТФ или переноса электронов по дыхательной цепи митохонд­рий, что подразумевает активный транспорт.



В пассивном транспорте различают: а) простую диффузию; б) перенос через поры, каналы; в) транспорт с помощью переносчиков - на основе диффузии переносчика вместе с веществом в мембране, т. е. эстафетной передаче (временная цепочка поперек мембраны).

Для описания диффузии веществ через клеточные мембраны пользуются не математическим выражением закона Фика: An/At = -DS• (Ас/Ах), а более простым уравнением (т. к. концентрационный градиент (Ас/Ах) клеточной мембраны определить трудно):

Am/At = -PS(CrC2), [1] где С и С2 - концентрации по разные стороны мембраны; Р - коэффициент проницаемости, зависящий от свойств мембраны.

Диффузия может происходить также, если на границе раствора и чистого растворителя (или двух растворов различной концентрации) поместить полупроницаемую мембрану, способную пропускать только молекулы растворителя. Свойствами полупроницаемых мембран обладают многие природные пленки (стенки кишечника, протоплазма и др.)

Явление преимущественно одностороннего проникновения растворителя (диффузию) через полупроницаемую мембрану из растворителя в раствор или из раствора с меньшей концентрацией в раствор с большей концентрацией называется осмосом.

С точки зрения термодинамики движущей силой осмоса является стремление системы к выравниванию концентраций; так как при этом энтропия системы возрастает (DS>0), энергия Гиббса системы (DG) соответственно уменьшается, химические потенциалы выравниваются. Поэтому осмос можно представить как направленный самопроизвольный проход молекул растворителя через мембрану, разделяющую растворы с различными значениями химического потенциала растворителя.

Осмос можно наблюдать в специальных приборах - осмометрах (рис. 14, с. 68). Основной его деталью является осмометрическая ячейка (1), отделенная от сосуда (4) с чистым растворителем полупроницаемой мембраной (2), пропуска­ющей только молекулы растворителя. Ячейку с концентрированным раствором

погружают в сосуд с растворителем - менее концентрированным раствором. В начальный момент времени химический потенциал воды во внутреннем сосуде осмометра меньше химического потенциала воды во внешнем сосуде. По исте­чении некоторого времени часть воды перешла во внутренний сосуд; разность химических потенциалов воды в системах, разделенных мембраной, уменьши­лась. Вода проникает через перегородку, оказывая на нее определенное давление - осмотическое давление. Процесс переноса молекул воды будет продолжаться до тех пор, пока гидростатическое давление не уравновесит осмотическое. Осмо­тическое давление можно определить, измерив гидростатическое давление стол­бика воды в трубке (3):

p = h*r,

где р - осмотическое давление; h - высота подъема жидкости; г - плотность раствора.

Таким образом, осмотическое давление численно равно силе, приходящейся на еди­ницу поверхности, которую нужно приложить к поверхности полупроницаемой мембраны, чтобы предотвратить проникновение молекул воды в раствор с меньшим ее химическим по­тенциалом.

Несмотря на различный механизм воз­никновения осмотического и газового давле­ния, Вант-Гофф установил, что осмотическое давление сильно разбавленных ра­створов подчиняется законам идеальных газов, причем тем точнее, чем ниже концентрация растворенного вещества.

Закон Вант-Гоффа гласит: "Осмотическое давление разбавленного раство­ра равно давлению, которое проявляло бы растворенное вещество, если бы оно было газообразным и занимало объем, равный объему раствора". Уравнение для описания осмотического давления для растворов неэлектролитов можно за­писать так:

p = (m/MV)-RT = C-RT, [2]

где р - осмотическое давление, кПа;

С - молярная концентрация, моль/л;

R - универсальная газовая постоянная, равная 8,31 (кПа-л)/(моль-К); Т - абсолютная температура, К.

Таким образом, для осмотического давления в истинных растворах низко­молекулярных веществ имеет значение только число растворенных частиц, а не их масса, размеры и форма.



2.3. Изотонический коэффициент. Теория Дебая-Хюккеля. Активность. Коэффициент активности. Ионная сила

Опыт показал, что у растворов, проводящих электрический ток (электроли­ты), более высокое, чем по закону Вант-Гоффа, осмотическое давление, они ки­пят при более высокой температуре и замерзают при более низкой, чем это сле­дует из закона Рауля. Существенным является тот факт, что концентрация кинети­чески самостоятельных частиц в растворах электролитов всегда больше, чем это следует из аналитической концентрации. С тем, чтобы свойства растворов элект­ролитов удовлетворительно описывались уравнениями, выражающими следствие из закона Рауля, Вант-Гоффом был введен поправочный эмпирический коэффи­циент, называемый сейчас изотоническим или коэффициентом Вант-Гоффа (i):

p=iCRT, [3]

Изотонический коэффициент находят как отношение между наблюдаемы­ми для электролитов (опытными) и вычисляемыми для неэлектролитов (расчет­ными) значениями следующих величин:

i = p /р = DT /DT = DT /DT [4]

опыт. расч. зам.опыт. зам.расч. кип.опыт. кип.расч. L J

Коэффициент Вант-Гоффа учитывает ионизацию веществ и взаимодействие ионов и молекул в растворе. Значение i для раствора данного электролита увели­чивается по мере разбавления, стремясь в пределе к целому значению, равному числу ионов, возникающих при диссоциации структурной единицы электролита.

Для неэлектролитов, растворенных в воде, i равно 1 (i =1).

Для сильных электролитов i=v, где v число ионов, которое образуется при диссоциации.

Например, для раствора натрия хлорида i->2, так как NaCl^Na++Cl~ и

2+

v=2; изотонический коэффициент кальция хлорида i -> 3, так как СаС12^ Са +2С Г и v=3. Если соль подвергается гидролизу, то часть ионов взаимодействует с во­дой и i^v. В этом случае неободимо учитывать степень гидролиза соли.



В растворах слабых электролитов кинетически активными частицами, на­ряду с ионами разной природы, являются и молекулы, не подлежащие иониза­ции. В этом случае нужно учитывать степень ионизации (а) электролита и сту­пенчатость процесса ионизации.

Для слабых электролитов, ионизирующих в одну ступень, связь изотони­ческого коэффициента с а выражается уравнением:

i = l+a(n-l). [5]

Итак, несмотря на практически полную ионизацию, опытные значения ос­мотического давления, понижения температуры замерзания и повышения тем­пературы кипения у растворов сильных электролитов меньше, чем значение ве­личин, полученные для 100% ионизации.

В 1923 году Дебай и Хюккель выдвинули теорию, согласно которой в растворах сильных электролитов каждый ион окружен со всех сторон ионами противоположенного знака, вследствие чего движение ионов ограничено. Ионы сильного электролита в растворе взаимодействуют между собой благодаря наличию значительных электростатических сил, в результате чего ионы одного знака образуют вокруг иона другого знака так называемую ионную атмосферу. Необходимо также учитывать сольватацию ионов. Ионная атмосфера и сольватная оболочка замедляют движение ионов в растворе и являются причиной кажущейся неполной ионизации. Кроме того, в растворах сильных электролитов при высоких концентрациях может происходить ассоциация ионов. Для учета этих влияний состав растворов электролитов следует характеризовать не аналитической концентрацией, а эффективной концентрацией, называемой активностью (Льюис, 1907).

Между активностью и аналитической концентацией ионов существует связь:

a = f-C, [6]

где f - коэффициент активности, зависящий от концентрации (обычно f < 1); а - активность, моль/л; С - концентрация электролита, моль/л.

В разбавленных растворах сильных электролитов f = 1, тогда а = с.

Активность иона зависит от напряженности существующего в растворе электрического поля, которое количественно характеризуется ионной силой ра­створа I:

1 = 0,5£С-22., [7]

где с{ - молярная концентрация иона в растворе, моль/л; Z - заряд иона.

Ионная сила - величина аддитивная: каждый электролит вносит свой вклад в величину I независимо от других. Для разбавленных растворов коэффициент активности можно рассчитать по уравнению Дебая-Хюккеля:

\gf=-0,5z2^I [8]

Поскольку в растворах слабых электролитов ионная сила низкая, для них, как и для разбавленных расторов сильных электролитов, а^с.

Все биологические жидкости представляют собой водные растворы с боль­шим значением ионной силы, которая создается сильными электролитами.



Достарыңызбен бөлісу:
1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   12




©dereksiz.org 2024
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет