ВЫЯВЛЕНИЕ МЕХАНИЗМОВ ВЛИЯНИЯ СУПЕРИНВАЗИОННОГО

122
Паразитирующие организмы сталкиваются с проблемами выживания не 
только в окружающей среде, но и в адаптивно меняющейся среде хозяина, где они 
паразитируют, а хозяин контролирует течение инфекции. Ответные реакции в 
виде воспаления, фагоцитоза, антительного ответа хозяина и есть препятствия для 
патогена, который для выживания в клетке должен совершенствовать свои 
тактические приемы, уклоняясь или преодолевая эти барьеры. 
Паразитирующие патогены «научились» справляться с ответной (защитной) 
реакцией хозяина. Структурно-функциональный подход к расшифровке 
механизмов персистирования бактерий показал, что наиболее уязвимой мишенью 
у патогена для защитных сил хозяина является пептидогликан [30].
Любые адаптационные процессы бактериальной клетки, направленные на 
защиту пептидогликановой структуры клеточной стенки, следует рассматривать в 
качестве механизмов персистенции бактерий.
Паразитарная сенсибилизация предопределяет системность поражения 
организма, что усугубляет течение патологического процесса в организме 
обитания паразита.
В доступной литературе вопрос о механизме патогенеза на фоне 
суперинвазионного описторхоза (с многократными заражениями) освещен 
недостаточно. Не проводилось комплексного изучения взаимосвязи заболеваний 
внутренних органов, иммунной системы и поражения различных систем 
организма. 
Установлено, что гельминты отягощают течение микробных и вирусных 
болезней вследствие разнообразных причин: способности гельминтов 
инокулировать микробную флору, повреждать слизистую оболочку желудочно-
кишечного тракта и дыхательных путей, облегчать проникновение патогенной 
микробиоты в ткани. В основе иммунных механизмов тормозящего действия 
гельминтов на защитные реакции хозяина, по-видимому, лежат разнообразные 
пути гетерологичной иммуносупрессии при гельминтозах. Поэтому нарушение 
функций этих клеток при гельминтозах, и при описторхозе в частности, может 

123
способствовать подавлению иммунного ответа в отношении вирусов, бактерий и 
простейших [207].
У больных хроническим описторхозом отмечается достоверно большее 
количество перенесенных инфекционных заболеваний. В гиперэндемичном очаге 
описторхоза Западной Сибири наблюдается частое сочетание описторхоза и 
хронического гепатита В или С [64].
Наиболее распространенный путь проникновения вирусов и бактерий в 
организм гельминтов: их активное поглощение личинками и половозрелыми 
гельминтами [97, 141, 230]. Установлено также, что S. typhi, бактерии родов 
Staphylococcus и Steptococcus способны проникать и размножаться в маритах 
трематод рода Opisthorchis [110]. 
Известно, что описторхоз, клонорхоз, шистосомоз и цистицеркоз 
предрасполагают к развитию злокачественных новообразований [35]. В 
Тюменской 
области 
отмечается 
высокая 
частота 
встречаемости 
холангиокарциномы [32]. 
Установлено [137, 204], что O. felineus, особенно при многократных 
суперинвазиях, оказывают выраженное промоторное действие, как в месте 
локализации паразитов, так и в других отделах желудочно-кишечного тракта. 
Выявлено, что в рыбе из Оби и Иртыша, содержащей метацеркарии O. felineus, 
были обнаружены печеночные канцерогены производственного происхождения – 
диметилнитрозамин и диэтилнитрозамин [204]. 
Пролиферативные эффекты в симбионтных системах прослежены у 
микроорганизмов – про- и эукариотов, целесообразность и механизм которых 
выяснен недостаточно [30, 77, 119, 230]. 
В литературе обсуждается вопрос о значении продуктов метаболизма в 
токсическом воздействии O. felineus на функциональное состояние нервной 
системы человека и клинико-анатомические проявления болезни. В патогенезе 
описторхозной инвазии придается значение токсико-аллергическому фактору, 
обусловленному воздействием возбудителя на организм метаболитов паразита 
[268, 266]. Ряд авторов полагают, что продукты метаболизма O. felineus и 

124
вещества, образующиеся в результате их гибели, оказывают не только 
сенсибилизирующее, но и токсическое действие. По данным некоторых авторов 
(И.С. Новицкий, 1959; цит. по Д.Д. Яблокову [268]) в основе клинико-
анатомических 
проявлений 
болезни 
лежит 
первичное 
поражение 
нервнорецепторных аппаратов в органах локализации O. felineus, которое 
обусловливает нарушение кортико-висцеральный регуляции и изменение 
реактивности тканей. Однако экспериментального подтверждения эти гипотезы 
до сих пор не получили. 
В работах последних лет убедительно показано дистантное (вне эконишей 
O. felineus) влияние на ускоренные репаративные процессы в хрящевой, костной 
тканях, выраженные фибропластические реакции в легких лабораторных 
животных и человека, обусловленные инициацией метаболитов паразитов и 
экспрессией генов, ответственных за пролиферативные процессы [104, 35, 164, 
221,182].
Целью 
нашего 
исследования 
была 
оценка 
общетоксического
3
, 
ростстимулирующего эффектов марит O. felineus in vitro (на культуре подвижных 
клеток) и в эксперименте на растениях.
Критерий токсического действия определялся изменением двигательной 
активности сперматозоидов под воздействием химических соединений, 
содержащихся в экстракте высушенных на воздухе нативных марит O. felineus, по 
сравнению с изотоническим фильтратом модельной среды. 
В качестве тест-объекта использовали сперму крупного рогатого скота, 
замороженную в парах жидкого азота (tº минус 210°С) и хранившуюся в сосудах 
Дьюара.
Экстракт из испытуемого образца готовили путем настаивания в 
дистиллированной воде (модельная среда). Навеску из высушенных на воздухе 
нативных марит O. felineus массой в 1 г помещали в сухую чистую колбу и 
добавляли модельной среды в соотношении 1:10. В другую колбу наливали 
3
Исследования проведены совместно с заведующей токсикологическим отделением Л.А. Прилуковой 
(ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Тюменской области»)

125
модельную среду и обе колбы оставляли на 12 час при температуре 37°С. После 
окончания экстракции растворы подвергли фильтрации через бумажные фильтры 
ВФА-ВП-10. Затем из модельной среды и экстракта готовили изотонические 
растворы, добавляя в них сухие реактивы глюкозы (4 г), цитрата натрия (1 г), 
фильтрат (100 мл). 
В каждую пробирку с модельной средой и опытным экстрактом из марит O. 
felineus вносили по 0,1 мл раствора спермы. Полученную смесь экстрактов и 
спермы из каждой пробирки переносили в капилляры (минимум по 5 на 1 
образец) и устанавливали в каретку прибора. В качестве измеряемого параметра 
использовали интегральную подвижность сперматозоидов в суспензии m, которая 
пропорциональна концентрации подвижных сперматозоидов c
m
и среднему 
модулю скорости движения клеток ν: 

жүктеу/скачать 2.68 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: