Взятие и пересылка материала при микозах

76. Стригущий лишай, парша.

Для исследования берут чешуйки или корочки с периферии пораженного участка, не подвергавшегося лечению. Патологический материал пересылают в чистой закрытой стеклянной посуде (пробирки, флаконы из-под антибиотиков).

77. Кандидамикоз (молочница).

Для прижизненной диагностики кандидамикоза в лабораторию направляют в стерильных пробирках соскобы из пораженных участков слизистой оболочки ротовой полости. При подозрении на кандидамикоз птиц в лабораторию лучше направить больную птицу. При массовых заболеваниях коров маститами молоко стерильно сдаивают из пораженных долей вымени в стерильные пробирки, которые с нарочным срочно направляют в лабораторию. Перед взятием проб молока соски вымени тщательно протирают тампоном, смоченным в разведенном (50%-ном) спирте. Первую порцию молока, находящегося в канале соска, сдаивают.

Для посмертной диагностики в лабораторию направляют части различных пораженных органов или свежие трупы птиц.

 Для гистологического исследования материал консервируют 10%-ным водным раствором формалина.

78. Эпизоотический лимфангоит.

Для лабораторной диагностики посылают: стерильно собранный гной из невскрывшихся абсцессов (в пробирке или пастеровской пипетке); соскобы с поверхности язв (в пробирке); тонкие высушенные на воздухе мазки из гноя (на предметных стеклах).

79. Аспергиллез.

При подозрении на аспергиллез у павших или вынужденно убитых животных берут измененные с гранулематозным процессом участки легких и других органов в стерильные банки с притертой пробкой. Трупы птиц направляют в лабораторию в водонепроницаемой таре.

80. Актиномикоз.

Для микологического исследования направляют: экстирпированные кусочки гнойной опухоли из мест локализации процесса в стерильном растворе глицерина (в баночке с притертой пробкой);

Гной из абсцессов, стерильно взятый в пробирку.

Для гистологического исследования направляют кусочки зафиксированных пораженных органов или тканей.

81. Псевдоактиномикоз (актинобациллез).

В лабораторию направляют: гной из невскрывшихся абсцессов, стерильно взятый в пробирки; экстирпированные опухоли и пораженные лимфатические узлы, участки внутренних органов: легких, печени, почек, селезенки и др., консервированные (см. пункт 81) в стеклянных банках с герметической упаковкой.

 

Взятие и пересылка материала при паразитарных болезнях

82. Пироплазмидозы и анаплазмозы.

Для подтверждения диагноза на пироплазмоз (лошадей, крупного рогатого скота, овец, собак, свиней), тейлериоз, франсаиеллез, бабиезиоз (крупного рогатого скота и овец), нутталлиоз лошадей, анаплазмозы (крупного рогатого скота, овец) необходимо послать на исследование мазки из периферической крови. Мазки крови следует брать от больных животных в период развития у них симптомов болезни, при повышенной температуре и до применения специфического лечения. При тейлериозе, кроме того, посылают мазки из материала, полученного путем пункции из увеличенных лимфатических узлов. Для приготовления мазка при исследовании на кровопаразитарные болезни берут первую каплю крови (в первой капле паразитов больше, чем в последующих). Если крови мало или она свернулась, то ватой снимают сгусток и мазок делают из вновь выступившей капли. Мазки делают тонкие, берегут от мух и прямых солнечных лучей, предохраняют от запыления и держат в сухом месте. Сухие мазки фиксируют в спирт-эфире, этиловом спирте и посылают в лабораторию в количестве не менее двух. Зимой приготовленные мазки немедленно опускают в спирт.

 Если мазки делают из материала трупа животного, то для их приготовления берут периферическую кровь из уха и из почек, селезенки, печени, сердца. Мазки необходимо брать из свежих трупов.

 Для реакции связывания комплемента при исследовании на анаплазмозы посылают пробы цельной крови или сыворотки. Мазки от каждого животного завертывают в чистую бумагу. Вместе с мазками посылают в пробирках клещей, собранных с разных участков тела больных животных и фиксированных в 70%-ном спирте. Внутрь пробирки вкладывают этикетки из плотной бумаги, надписанные простым карандашом, с указанием наименования хозяйства, вида животного и даты сбора.

83. Трипанозомоз (случная болезнь) лошадей, ослов и их гибридов.

Для микроскопического исследования посылают 8-10 мазков на предметных стеклах из экссудата «талерных бляшек» и из соскобов со слизистой оболочки влагалища или уретры. Для реакции связывания комплемента посылают пробы цельной крови или сыворотки.

 Для микроскопического исследования на месте (в хозяйстве) делают раздавленные капли из экссудата и соскобов.

 84. Су-ауру (трипанозомоз) ослов, лошадей, собак.

Для микроскопического исследования приготовляют мазки и толстые капли крови из уха. Для установления диагноза необходимо материал брать повторно. В лабораторию направляют (или исследуют на месте) сыворотку крови или цельную кровь для исследования методом постановки формолреакции.

От трупа берут кусочки селезенки, печени, почек, костного мозга и лимфатических узлов, делают мазки и посылают в лабораторию. Мазки готовят не позже чем через 6-12 часов после смерти животного.

85. Трихомоноз. Для микроскопического и бактериологического исследований посылают:

а) от коров — влагалищные и маточные выделения, абортированный плод, плодовые воды и оболочки;

б) от быков — сперму и смыв (физиологическим раствором) из препуция.

Материал пересылают в плотно закрытой стерильной посуде (пробирки, флаконы), который доставляют в лабораторию не позднее 24 часов после взятия.

86. Лейшманиоз собак. Для микроскопического исследования посылают трубчатую кость, мазки из селезенки, лимфатических узлов, печени и костного мозга.

От больных животных при наличии у них поражения кожи (язв, рубцов) посылают мазки, приготовленные из соскобов, сделанных с пораженных участков кожи путем скарификации. При отсутствии пораженной кожи делают пункцию селезенки и из полученного материала готовят мазки.

87. Кокцидиозы.

Для исследования посылают фекалии, стенки пораженного кишечника, кусочки печени (кроликов), почек. Трупы мелких животных и птиц доставляют целиком.

88. Токсоплазмоз.

Для микроскопического исследованиия посылают мазки-отпечатки из головного мозга, паренхиматозных органов, околоплодной жидкости, влагалищных выделений, спинномозговую жидкость, кусочки органов (для биопробы). Для РСК посылают пробы свежей крови или неконсервированную сыворотку.

89. Балантидиоз свиней.

В лабораторию для исследования посылают свежие фекалии, но лучше исследование проводить в хозяйстве.

90. Спирохетоз кур.

Для исследования в лабораторию посылают мазки крови от больных или павших птиц, трупы птиц.

91. Гистомоноз.

В лабораторию посылают мазки из содержимого клоаки, кишечника и отпечатки из очагов некроза печени от павших птиц, трупы птиц.

92. Эперитрозооноз овец.

В лабораторию посылают мазки крови. Для постановки биопробы посылают свежую кровь от подозрительных по заболеванию животных.

93. Безноитиоз крупного рогатого скота.

Для подтверждения диагноза в лабораторию посылают мазки крови (из сосудов уха), кусочки подкожной клетчатки, склеры, имеющие на поверхности цисты (узелки).

 94. Гельминтозы.

В лабораторию для исследования доставляют пробы фекалий (30-50 г), завернутые в пергаментную бумагу, на которой ставят номер пробы. Патологические препараты фиксируют в 10%-ном растворе формалина.

Паразитических червей доставляют в пробирках или банках в консервированном виде, как указано ниже.

 а) Трематоды и цестоды (сосальщики и ленточные). Извлеченных из органов гельминтов помещают (для сохранения естественной формы тела) в кюветы с водой или физиологическим раствором. Затем целых гельминтов или отдельные части их — стробилы прессуют между двумя предметными стеклами в чашке Петри, наполненной 70%-ным спиртом (несколько часов), помещают в пробирку или банку с 70%-ным спиртом и пересылают в лабораторию.

б) Акантоцефалы (скребни). Фиксируют в 70%-ном спирте. Следят за тем, чтобы хоботок у них был в вытянутом состоянии. Этого достигают легким надавливанием, пока паразит свежий (живой или недавно погибший). Убедившись (под лупой или микроскопом), что хоботок лежит правильно, паразита помещают в пробирку или банку со спиртом.

в) Нематоды (круглые черви). После кратковременного промывания в воде нематод переносят в пробирку или банку с жидкостью Барбагалло (3%-ный раствор формалина на изотоническом растворе поваренной соли: 30 мл формалина, 9 г поваренной соли, 1000 мл дистиллированной воды). Исключение составляют филярии, которых сразу после извлечения из органов переносят в жидкость Барбагалло.

 г) Пузырчатые формы ленточных червей — эхинококки, финны, ценурусы и др. фиксируют в жидкости Барбагалло.

 95. Чесотка.

Для микроскопического исследования посылают свежие соскобы пораженных участков кожи. Соскобы берут обязательно на границе между пораженной и здоровой частью кожи. При этом надо выбирать участки, на которых «чесоточные корки» имеют минимальный диаметр, так как в старых очагах клещи обычно отсутствуют. Соскобы для исследования берут брюшистым скальпелем или острой ложкой, соскабливая мелкие корочки и эпидермис. Если выраженных очагов поражения нет, соскобы делают с мест обычного нахождения чесоточных клещей.

У остриженных овец берут соскобы со складок или уплотненных участков кожи в надглазничных ямках, с внутренней поверхности ушных раковин, с подхвостовой складки и с других неостриженных мест. У неостриженных овец соскобы делают с участков взъерошенной и склеенной шерсти, а также мест, покрытых корочками.

У лошадей, крупного рогатого скота, свиней соскобы делают более глубокие, снимая слой эпидермиса до появления в соскобе сукровицы.

 У птиц соскобы делают под роговыми чешуйками передней поверхности конечностей кожи, с перьев (роговые чешуйки выщипывают с кожи, с перьев соскобы делают скальпелем).

 Соскобы не консервируют; их посылают в чистых пробирках, закрытых обязательно резиновыми пробками. Если в течение ближайших 6-7 дней исследование не может быть произведено, соскобы кладут в 70%-ный спирт.

96. Демодекоз (железничная чесотка).

На месте нахождения демодекозных бугорков выщипывают шерсть и острым скальпелем делают соскоб. Содержимое соскоба переносят на предметное стекло, покрывают другим предметным стеклом, завертывают в бумагу и перевязывают. На бумаге отмечают дату взятия соскоба, вид и номер животного.

97. Насекомые и их личинки.

Паразитических насекомых (летающие двукрылые) необходимо сначала «приморить». Для этого насекомое помещают в пробирку и закрывают пробкой, к нижней стороне которой прикалывают вату, пропитанную уксусным эфиром или хлороформом. Необходимо, чтобы ни одной капли яда не попало на само насекомое. Убитое насекомое помещают на ватный матрасик. Личинок, куколок и взрослых насекомых, не покрытых чешуйками или длинными волосками и неокрашенных в яркие цвета, помещают в 70%-ный спирт. Белых личинок во избежание почернения живыми бросают на несколько минут (2-3) в кипяток или на 30-50 секунд в раствор азотной кислоты, а затем помещают в спирт.

 Мелких насекомых кладут в маленькие пробирки со спиртом, закрывают корковой пробкой. В пробирку вкладывают этикетку с указанием вида животного, даты и места сбора насекомых. В крайнем случае вместо 70%-ного спирта берут 2%-ный раствор формалина (для этого обычный 40%-ный формалин разбавляют в 15-20 раз водой).

 

Взятие и отправка патологического материала от трупов, павших и больных животных при подозрении на отравление

 98. Подозрение на отравление могут вызвать следующие признаки:

а) характерный запах содержимого желудка (горько-миндальный, чесночно-хлороформенный и т. п. при исключении запаха примененных лекарств);

б) желтая (от азотной, пикриновой кислоты, солей хрома), зеленая, синяя (от солей меди) или иного цвета окраска содержимого желудка;

 в) кровянистое содержимое желудка;

г) подозрительные включения в содержимом желудка — белые кристаллы сулемы и стрихнина, нерастворившиеся белые кристаллы мышьяка;

д) набухшие, увеличенные, дряблые, легко разрывающиеся, серо-желтой окраски и т. п. внутренние стенки желудка, почки, печень, сердце;

е) поражения начальных отделов пищеварительного тракта (ротовой полости, пищевода, желудка);

ж) изменение цвета и консистенции крови.

99. При подозрении на отравление животных в лабораторию направляют материал от трупов павших животных для химического и гистологического исследований. Одновременно с целью определения источника отравления посылают все корма (по 1 кг каждого вида корма), которые скармливали животному. Кроме этого, обязательно посылают остатки кормов из кормушки.

100. Для химического исследования в лабораторию посылают в отдельных банках следующий материал:

 а) часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (в количестве 0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота и верблюдов — часть пищевода и сычуга и небольшое количество содержимого из разных мест сычуга, рубца.  Желудок и его содержимое берут в следующем порядке.  При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (в двух местах по две перевязки) и перерезают между перевязками. Желудок извлекают и кладут в чистую стеклянную посуду (от крупных животных на чистое место), затем вскрывают его по передней стенке.  Содержимое желудка предварительно (не выбирая из желудка) перемешивают, после чего осторожно, чтобы не загрязнить, берут часть его. Для перемешивания нельзя использовать металлические предметы.

б) отрезок тонкого отдела кишечника (длиной до 0,5 м) из наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

 в) отрезок толстого отдела кишечника (длиной до 40 см) из наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

г) часть печени (0,5-1 кг) с желчным пузырем (от крупных животных), а от мелких животных печень целиком;

д) одну почку;

е) мочу в количестве 0,5 л;

ж) скелетную мускулатуру в количестве 0,5 кг;

Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:

 а) при подозрении на отравление через кожу (путем инъекции) — часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введения яда;

 б) при подозрении на отравление газами (синильной кислотой, сероуглеродом и т. д.) — наиболее полнокровную часть легкого (в количестве 0,5 кг), трахею, часть сердца, 200 мл крови, часть селезенки и головного мозга. От мелких животных (в том числе и от птиц) берут органы целиком.

При вскрытии отрытого из земли трупа животного надо взять: сохранившиеся внутренние органы в количестве до 1 кг, скелетную мускулатуру в количестве 1 кг, землю под трупом 0,5 кг из двух-трех мест.

101. Для гистологического исследования посылают небольшие кусочки, размером 1×3х5 см, следующих органов: печени, почек (обязательно с наличием коркового и мозгового слоев), сердца, легкого, селезенки, языка, пищевода, желудка, тонкого и толстого отделов кишечника, скелетной мускулатуры, лимфоузлов, головного мозга (половину мозга в стерильной банке).

Кусочки должны быть взяты из различных участков органов на границе пораженной и непораженной части ткани и тотчас же помещены в 10%-ный раствор формалина из расчета на 1 часть патологического материала 15 частей раствора формалина.

 102. При подозрении на отравление веществами, употребляемыми для борьбы с сельскохозяйственными вредителями, минеральными удобрениями, красками посылают пробы их в количестве от 100 до 1000 г.

103. От больных животных при подозрении на отравление посылают: рвотные массы, желательно первые порции; мочу — все количество, которое удалось получить; кал — в количестве 0,5 кг; содержимое желудка, полученное через пищеводный зонд; корма и вещества, которые могли явиться причиной отравления.

104. При подозрении, что отравление наступило вследствие поедания ядовитых растений, берут для ботанического анализа пробы растений в следующем порядке: деревянную рамку с внутренним размером в 1 м² накладывают на травостой луга или пастбища в местах выпаса скота; все оказавшиеся внутри рамки растения срезают под корень. Если травостой однотипный, пробу с 1 га луга или пастбища берут в 3-5 местах, а если травостой разнотипный, количество проб увеличивают с целью большего охвата различных растений и посылают среднюю пробу.  Если пробу трав, взятых для исследования, можно доставить в лабораторию в течение нескольких часов, то траву посылают в сыром виде; при длительной пересылке пробы сушат и доставляют в сухом виде. Пересылают пробы трав в коробках или в плетеных корзинах. Пробы должны быть взяты ветеринарным специалистом или зоотехником.

105. Материал, взятый для химического исследования, нельзя обмывать и держать вместе с металлическими предметами; его отправляют в чистом, неконсервированном виде. Консервировать материал животного происхождения можно только в том случае, если он будет доставлен в лабораторию не ранее чем через 3-4 дня после взятия.

Консервировать такой материал можно только спиртом-ректификатом в соотношении 1 часть спирта: 2 части материала. Одновременно посылают и пробу спирта (не менее 50 г), которым законсервирован материал.

Применять два консервирующих вещества нельзя, так как они сами являются ядами (хлороформ) или разрушают некоторые яды (формалин).

Упаковывают материал в чистые, широкогорлые стеклянные банки, плотно закрывающиеся стеклянными притертыми пробками, а при отсутствии их — чистыми, не бывшими в употреблении корковыми пробками или чистой писчей или вощеной бумагой.

Поверх пробки банку обертывают чистой бумагой, обвязывают тонким шпагатом (или толстой крепкой ниткой), концы которого припечатывают сургучной печатью.

На каждую банку наклеивают этикетку, на которой чернилами записывают, какие органы и в каком количестве (по весу) помещены в банку, вид и кличку животного, дату падежа и вскрытия трупа животного, указывают, какое подозревается отравление и кому принадлежит животное.

Взятый материал должен быть отправлен в лабораторию немедленно с нарочным.

 

Взятие и пересылка материала для исследования на болезни рыб

106. Больных или подозрительных по заболеванию инфекционными болезнями рыб доставляют в ветеринарную лабораторию в живом виде. Для исследования отбирают 10-15 рыб на различных стадиях заболевания с явно выраженными клиническими признаками болезни.

107. Рыб перевозят в молочных бидонах, ваннах или в других емкостях, предназначенных для перевозки живой рыбы, заполненных на ¾ объема водой из того же водоема, откуда взята рыба, или из артезианской скважины.

Летом при длительной транспортировке воду с рыбой постепенно охлаждают до температуры 12-15°С, добавляя мелкие кусочки льда. Чтобы не вызвать у рыб температурного шока и простудных явлений, нельзя пересаживать рыбу в воду, имеющую температуру на 7°С и более ниже, чем в водоеме.

108. Если нет возможности доставить живую рыбу, то у крупных рыб берут кусочки пораженных органов и тканей, помещают их в стерильную стеклянную посуду, закрывают пробкой, заливают парафином и направляют с нарочным в лабораторию. Жидкий патологический материал (кровь, экссудат и т. д.) доставляют в запаянных стерильных пастеровских пипетках.

Летом бактериологические исследования патологического материала следует проводить не позднее чем через 2 часа после его взятия. В исключительных случаях делают бактериологические посевы на МПБ и МПА в лаборатории рыбоводческой организации.

109. Для вирусологического исследования берут кусочки из пораженных органов и тканей весом не более 3-5 г, замораживают или консервируют в 50%-ном растворе химически чистого глицерина (рН 7,2-7,4) (см. пункт 6) в соотношении 1:5-1:10, помещают в стерильные стеклянные флаконы, закрывают резиновой пробкой и заливают парафином.

110. Материал для патологогистологического исследования берут от павших и вынужденно убитых рыб. Мелких рыб (мальки и сеголетки) после вскрытия брюшной полости фиксируют целиком, а от крупных берут органы или кусочки органов размером 2×3 см и толщиной 0,5-1,0 см.

 Кусочки из пораженных органов и тканей вырезают так, чтобы были захвачены нормальные и пораженные участки.

Независимо от степени поражения берут кусочки из различных органов: кожи с подлежащей мускулатурой, жабр, печени, почек, селезенки, сердца, кишечника, плавательного пузыря, головного мозга.

Кишечник перед фиксацией осторожно вскрывают или делают на нем несколько надрезов, чтобы фиксирующая жидкость проникла в его полость.

Головной мозг осторожно извлекают целиком после вскрытия черепной коробки. Подлежащий исследованию материал помещают в широкогорлую стеклянную банку и фиксируют обычным способом (см. пункт 15).

111. Для гистохимических исследований патологический материал фиксируют в 96%-ном этиловом спирте, жидкости Карнуа (спирт абсолютный 60 мл, хлороформ 30 мл и ледяная уксусная кислота 10 мл) или жидкости Буэна (концентрированная пикриновая кислота 15 мл, формалин 5 мл, ледяная уксусная кислота 1 мл). Так как выбор фиксатора зависит от цели дальнейшей обработки материала, то на этикетке указывают фиксирующий раствор.

112. Кровь для исследования берут из хвостовой артерии или из сердца. Чешую на месте взятия крови слущивают скальпелем, кожу вытирают от слизи и дезинфицируют 70%-ным спиртом. Кровь насасывают в пастеровскую пипетку, затем переносят на часовое стекло и быстро отбирают количество, необходимое для гематологических исследований (подсчета количества форменных элементов, определения гемоглобина, приготовления мазков и т. д.).

Мазки крови для исследований на кровепаразитов (трипанозомы и криптобии) и выведения лейкоцитарной формулы готовят обычным способом. Высушенные мазки нумеруют иглой, остро отточенным карандашом или углом стекла на конце мазка или посередине и доставляют завернутыми по отдельности в чистой бумаге.

113. Для биохимических исследований цельную кровь предохраняют от свертывания, добавляя к ней лимоннокислый или щавелевокислый натрий (на 1 мл 2 мг), 1-2%-ный раствор гепарина (на 1 мл от 0,01 до 0,04 мл), и доставляют в лабораторию в герметически закрытых стеклянных сосудах (пробирках), снабженных этикеткой.

114. Сыворотку крови для биохимических и серологических исследований получают следующим образом. Кровь вносят в небольшие пробирки и оставляют при комнатной температуре для свертывания. Через некоторое время сыворотка отделяется от кровяного сгустка и ее отсасывают. Для лучшего сохранения сыворотку, предназначенную для серологических исследований, консервируют одним из следующих растворов: 2%-ной борной кислотой, 0,05%-ной карболовой кислотой (1-2 капли 5%-ного раствора карболовой кислоты на 1 мл сыворотки) или тиомерсалом 1:10000.

Сыворотку крови, предназначенную для биохимических исследований, отбирают стерильно пастеровскими пипетками и доставляют в запаянных стерильных ампулах. Цельную кровь и сыворотку транспортируют в термосе со льдом. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение суток и в исключительных случаях не позднее третьего дня после взятия крови.

115. Рыб, больных инвазионными болезнями, пересылают в лабораторию в живом виде, как указано в пункте 108. В ряде случаев допускается транспортировка целых рыб (сеголетки, годовики) или кусочков органов, завернутых в пергаментную бумагу или целлофан (обычную упаковочную бумагу или газету использовать нельзя), в термосе со льдом или в леднике.

 У крупных рыб извлекают пораженные паразитами органы (жабры, кишечник, печень и другие ткани) и посылают для исследования законсервированными в банках.

Целых рыб (сеголетки, годовики, двухлетки) или кусочки органов и тканей с паразитами консервируют в 70%-ном этиловом спирте или 4%-ном растворе формалина, хотя некоторые паразиты (особенно такие мелкие, как костия и др.) при этом могут быть утеряны.

116. Обнаруженных при клиническом осмотре и паразитологическом вскрытии рыб паразитических организмов, а также кусочки органов и тканей с наличием в них паразитов помещают в пробирки или флаконы с консервирующей жидкостью.

Протозойных паразитов наносят на покровное или предметное стекло и, не давая мазку подсохнуть, опускают в жидкость Шаудина (50 мл насыщенного раствора сулемы и 25 мл абсолютного спирта) на 20 минут.

Маленькие кусочки пораженных паразитическими простейшими тканей и органов фиксируют указанной смесью в течение 30-120 минут. Затем стекло промывают несколько раз водой и 70%-ным спиртом и сохраняют в нем до исследования. Влажные мазки, кусочки органов и тканей рыб с паразитами можно фиксировать также в жидкости Буэна. Фиксация мазков 1-20 минут, кусочков 1-12 часов.

Гельминтов, прежде чем консервировать, тщательно промывают в воде или физиологическом растворе.

Моногенетических сосальщиков (дактилогирус, гиродактилус и др.) консервируют в 4%-ном растворе формалина.

Трематод и мелких цестод помещают на предметное стекло, накрывают покровным стеклом или куском предметного стекла (для нежного прессования), заливают 70%-ным спиртом и оставляют на несколько часов.

После этого гельминтов перекладывают при помощи кисточки в пробирку (флакон) со спиртом. Одновременно часть умерщвленных в физиологическом растворе трематод (цестод), не подвергая прессованию (для сохранения естественной формы), помещают в пробирку с 70%-ным спиртом.

 Нематод и личиночные стадии цестод консервируют в жидкости Барбагалло (см. пункт 95). Для изготовления постоянных микропрепаратов в канадском бальзаме лучше пользоваться консервированием живых нематод в 70%-ном горячем спирте.

Крупных ленточных гельминтов после умерщвления в физиологическом растворе помещают в 70%-ный спирт.

При консервировании скребней в 70%-ном спирте добиваются выдавливания хоботка из влагалища путем слабого прессования передних концов с помощью покровных стекол.

Паразитических рачков консервируют в 3%-ном растворе формалина и сразу же переносят для хранения в 70%-ный спирт.

 Пиявок фиксируют в 1-2%-ном растворе формалина.

117. Патологический материал для бактериологических, паразитологических и других исследований снабжают этикеткой с обозначением вида и возраста рыбы, названия органа, из которого взят материал, времени и места вылова рыбы и взятия материала. Если в одну посуду помещают несколько объектов исследования, то этикетку хорошо прикрепляют к каждой рыбе (мальку, сеголетку) или органы и их кусочки завязывают вместе с этикеткой в марлю. Этикетки надписывают тушью или простым карандашом и опускают в посуду с материалом таким образом, чтобы легко можно было прочесть надпись.

118. При подозрении на отравления рыб стоками промышленных предприятий отбирают в местах общего выпуска среднесменные, по возможности среднесуточные пробы по 2-3 л.

Из водоема также берут пробы воды в количестве 2-3 л так, чтобы проба соответствовала всей массе исследуемой воды. Если водоем проточный, пробу берут на быстринах, перепадах, водосбросах и водоспусках. Пробы берут батометром из поверхностных (30-50 см от зеркала воды) и глубинных слоев. Воду для химического анализа отбирают в чисто вымытые (без мыла) склянки. Перед наполнением склянку промывают 2-3 раза исследуемой водой. При транспортировке проб зимой их нужно утеплить. Если доставка в лабораторию в теплое время займет свыше суток, взятые пробы консервируют. Для этого в одну пробу воды добавляют хлороформ из расчета 2 мл на каждый литр воды и хорошо взбалтывают.

119. Для химико-токсикологического исследования доставляют в лабораторию живых или недавно погибших рыб не менее пяти экземпляров каждого вида. Если доставить живых или свежеуснувших рыб невозможно, их консервируют спиртом-ректификатом. Консервировать материал другими веществами нельзя.

120. Грунт для исследования берут со дна водоема дночерпателем в количестве 2 кг. Грунт сушат на воздухе, растирают в ступке, просеивают через мелкое сито и упаковывают в широкогорлые банки или полиэтиленовые мешочки по 500 г в каждый.

121. Планктон берут планктонной сеткой. Для этого 50-100 л воды пропускают через сетку и собирают планктон.

122. Весь взятый для исследования материал: пробы воды, грунта, планктона и рыб упаковывают в тару, опечатывают и вместе с актом обследования водоема направляют в лабораторию с нарочным.