Диплом жизнь в Антарктиде как модель для астробиологических исследований



Дата30.06.2016
өлшемі189.36 Kb.
#167539
түріДиплом
ГБОУ Гимназия № 1505

«Московская городская педагогическая гимназия – лаборатория»




ДИПЛОМ


Жизнь в Антарктиде как модель для астробиологических исследований


автор: Алексеенок Мария 10 класс «Б»
руководитель: кбн Соина Вера Сергеевна

Москва

2014


СОДЕРЖАНИЕ
Введение

  1. Астробиология

  2. Почвы Антарктиды и их бактериальные сообщества

  3. Экспериментальная часть

    1. Материалы и методы

      1. Образцы антарктических почв

      2. Питательные среды, описание и приготовление

      3. Определение КОЕ в образцах

      4. Определение общей численности прокариот в образцах

      5. Выделение чистых культур и их исследование

    2. Результаты и обсуждение

      1. Учёт общей численности бактерий и КОЕ в образцах

      2. Характеристика чистых культур

Заключение

Список литературы


ВВЕДЕНИЕ

Астробиоло́гия (экзобиоло́гия) — наука, предметом которой является изучение происхождения, эволюции и распространения жизни во Вселенной. Людей давно интересует вопрос, существует ли жизнь на других планетах. В нашей стране первая книга, посвященная астробиологии вышла в 1953 году (Тихов Г.А., Астробиология, 1953). За последние 10-20 лет астробиология превратилась в самостоятельную отрасль биологии, по ней каждый год проходят научные международные конференции, и даже появился специальный научный журнал «Astrobiology». Астробиология основывается на достижениях других естественных наук: физики, химии, астрономии, биологии, экологии, планетологии, географии и геологии. Для исследований в области астробиологии учёные моделируют условия, схожие с внеземными, ведут исследования на космических станциях и на других планетах и космических телах солнечной системы, а также изучают жизнь, которая существует в суровых условиях на Земле. Целями астробиологии является поиск пригодной для жизни среды обитания, как в Солнечной системе, так и за её пределами, исследования происхождения и раннего развития жизни на Земле, а также исследования потенциальных возможностей адаптации жизни к сложным условиям на Земле и в космосе.

В настоящее время почвы и подпочвенные отложения Антарктиды рассматриваются как наиболее перспективные природные среды для изучения эволюции и сохранения жизни в экстремальных земных условиях, сходных с внеземными, например, обнаруженными на Марсе. Это связано с наличием повышенной солнечной радиации на этом материке в сочетании с низкими отрицательными температурами (в центральной части материка средние температуры зимних месяцев от −60 до −75 °С, летних от −30 до −50 °С; на побережье зимой от −8 до −35 °С, летом 0—5 °С) и недостатком влаги, что создает серьезные сложности для развития и жизнедеятельности живых организмов. Обнаружено, что наиболее жизнеспособными в таких суровых условиях являются микроорганизмы, и, прежде всего, бактерии. В экстремальных условиях почвенные бактерии вырабатывают различные стратегии переживания, оставаясь жизнеспособными. Это позволяет предполагать способность многих земных бактерий длительно выдерживать космические условия в естественной гетерогенной минеральной среде, какой является почва.

Важной задачей микробиологических исследований в Антарктиде является выделение чистых культур бактерий и изучение свойств обитателей различных типов экстремально холодных экосистем этого материка с целью последующего исследования их адаптивных особенностей и их использования в межпланетных экспериментах.

Целью моей работы является изучение жизнеспособных бактерий из образцов почв ранее не исследованных влажных долин Восточной Антарктиды, отобранных в 2012 году в районе станции Молодежная, 57 –ой Российской Антарктической экспедицией.

Мной были поставлены следующие задачи:



  1. Изучить информацию о почвах Антарктиды и их бактериальных сообществах и о важности их исследований для астробиологии.

  2. Освоить методы изучения бактерий в почвах, выделения и исследования чистых бактериальных культур.

  3. Определить общее количество бактерий и число КОЕ (количество образующих колонии бактерий) в почвенных образцах.

  4. Выделить чистые бактериальные культуры из почвенных образцов, описать их морфологию и исследовать с помощью светового микроскопа.

3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
3.1.Материалы и методы

      1. Образцы антарктических почв

В работе были использованы образцы почв, отобранных в районе влажных долин Холмов Талла, который является одним из самых теплых безледных пространств Восточной Антарктиды. Микробиологические исследования в данном районе ранее не проводились, а имеющиеся данные по заселению антарктических почв микроорганизмами в основном касаются Сухих долин Западной Антарктики.

Особенностью почв данного района является их формирование внутри скал в результате взаимодействия сообществ организмов с минералами породы, которые находят здесь свою экологическую нишу. К таким организмам относятся прежде всего водоросли и бактерии, развитие которых на дневной поверхности пород в значительной степени угнетается из-за внешних стрессовых воздействий - недостатка влаги, УФ- излучения, сильного ветра и низких температур. Такие сообщества называются эндолитными, а формируемые ими почвы, соответственно, эндолитными почвами. Подобные наземные экосистемы являются наименее изученными и интересными с точки зрения заселения живыми организмами экстремальных местообитаний и сохранения их активности в таких условиях. (Рис.1)





Рисунок 1. Межсопочная «влажная» долина.

группа 244Как отмечалось выше, доминирующими компонентами в таких живых системах являются бактерии и водоросли, которые образуют специфические биопленки, внутри которых происходит продукция и разложение органического вещества, и формирование примитивных почв с характерными горизонтами.

Рисунок 2. Биопленка, формирующаяся на поверхности минеральных зерен и образующая органоминеральный субстрат, который относится к продуктам почвообразования.
Для исследования был отобран профиль такой формирующейся эндолитной почвы, состоящий из трех горизонтов - верхнего, представляющего собой кремнезем (МЛ4), отобранный с глубины – 5 см, нижележащий торфяной горизонт (МN5) с глубины 10- см, и подстилающий его песчаный горизонт (МЛ6), отобранный на глубине 15 см.


Рисунок 3. Эндолитная почва с микропрофилем «влажной» долины

В работе основное внимание было уделено изучению гетеротрофных бактерий, разлагающих органическое вещество, продуцируемое первыми поселенцами на скалах и, таким образом, участвующих в формировании антарктических почв. Согласно опубликованным ранее данным, данная группа бактерий имеет наиболее высокие показатели сохранения жизнеспособности в антарктических почвах

Для выделения гетеротрофных бактерий использовали общепринятые методы:

- определение числа колоний образующих клеток, или единиц в 1 г образца почвы (число КОЕ на 1 г), что дает представление о количестве жизнеспособных культивируемых штаммов бактерий;

- определение общего числа клеток бактерий в образцах, выявляемых микроскопическим методом с окрашиванием клеток флюоресцирующими красителями.

Использование обоих методов позволяет определить степень заселенности изучаемых антарктических почв бактериями, и выявить корреляцию между общим числом бактерий в образцах почв, и тем числом клеток, которые сохраняют жизнеспособность и могут восстанавливать свой рост в предложенных благоприятных для развития условиях.




      1. Питательные среды, описание и приготовление

Определение КОЕ проводилось с помощью посева на плотные питательные среды LA (триптон (Difco)- 1,0%, дрожжевой экстракт (Difco)-0,5%, NaCl-1,0%, агар (Difco) - 1,5%) и TSA (триптиказо-соевый агар, Oxoid, Англия) и ТSA (INC Biomedicals Inc., USA) – 15 г/л). Приготовленные среды стерилизовали автоклавированием. Для приготовления чашек среды расплавляли в печи СВЧ до жидкого состояния и стерильно (в микробиологическом боксе около пламени горелки) разливали в чашки Петри. Приготовленные чашки открывали и оставляли под ультрафиолетом на 30-40 минут, чтобы питательные среды подсохли.


      1. Определение КОЕ в образцах

Из контейнера с образцом стерильно отбирали по 1 г. образца в стерильные пробирки и заливали 10 мл стерильной водопроводной воды. Полученные суспензии оставляли в холодильнике на 2 суток для активации клеток. Перед посевом образцы взбалтывали, давали возможность крупным почвенным частицам осесть в течение минуты, и стерильно наносили по 100 микролитров суспензии на чашки с питательными средами в трехкратной повторности. Стерильным микробиологическим шпателем равномерно распределяли капли по питательной среде (рис. 4).


Рисунок 4. Рассев бактериальной суспензии с помощью микробиологического шпателя. А – микробиологический шпатель, Б – процесс рассева, В – вид чашек с разным количеством высеянных колоний.
После этого чашки инкубировали в термостате при 20ºС в течение 7 суток, а затем подсчитывали число колоний, выросших на каждой чашке. КОЕ рассчитывали по формуле:

КОЕ = n*V1/V2, где

n – среднее число колоний на чашке

V1 – объем исходной суспензии (10 мл)

V2 –объём, высеянный на чашку (0,1 мл)


      1. Определение общей численности прокариот в образцах

Одним из наиболее совершенных методов выявления, изучения и количественного учета микроорганизмов в их естественной среде обитания является люминесцентная микроскопия в падающем свете. В данной работе использовался метод Звягинцева и Кожевина («Методы почвенной микробиологии и биохимии», Звягинцев Д.Г. и др., М., 1991). Приготовленные из почвенной суспензии препараты окрашивала специальным красителем акридином оранжевым. Яркие зеленые клетки хорошо заметны на темном или красном фоне почвенных частиц препарата.

Почвенную суспензию (1:10) переносили в мерный цилиндр на 100 мл и обрабатывали ультразвуком на диспергаторе УЗДН-1 в течение 2 минут в режиме 0,44 А, 15 Гц. Перед приготовлением препаратов колбу энергично встряхивали. Суспензию наносили микропипеткой на тщательно обезжиренное предметное стекло (0,01 мл на препарат) и равномерно распределяли петлей на площади 4 см2 . Предварительно начертили расположение препаратов в натуральную величину на бумаге, на которую в дальнейшем выкладывали предметные стекла для приготовления препаратов.

Препараты высушивали на воздухе при комнатной температуре. Затем, после фиксации легким нагреванием на пламени газовой горелки, окрашивали препараты водным раствором акридина оранжевого (разведение 1: 10 000; 2-4 мин).

Избыток акридина оранжевого удаляли в процессе промывки, для чего стекла погружали на 10 мин в кювету с водопроводной водой. Окрашенные препараты высушивали при комнатной температуре.

Для микроскопии на препарат наносили каплю воды и покрывали обезжиренным покровным стеклом. Лишнюю воду удаляли фильтровальной бумагой. Подсчет бактериальных клеток проводился с использованием люминесцентного микроскопа «Axioscope 2+» ZEIZZ, Германия (объектив х10, масляная иммерсия). Для каждого образца подсчитывали клетки в 30 полях зрения и подсчитывали среднее число клеток, наблюдаемых в поле зрения. Количество бактериальных клеток, содержащихся в 1 г почвы, вычисляла по формуле:

N=S1*a*n/V*S2*m, где

N – количество клеток в 1 г почвы,

S1 – площадь препарата (42*108 мкм2)

а – среднее количество клеток в поле зрения

n – показатель разведения бактериальной смеси (102)

V – объём капли наносимой на стекло (0,01 мл)

S2 – площадь поля зрения микроскопа (39740,625 мкм2)

m – масса образца (2 г)


      1. Выделение чистых культур и их исследование

Для выделения чистых культур бактерий проводился рассев на плотную питательную среду LA отдельных колоний каждого типа, выросших из каждого образца в опытах по определению КОЕ. Рассев проводили до отдельных колоний с помощью бактериологической петли методом истощающегося штриха по схеме, изображенной на рисунке 5. Петлю стерилизовали, прожигая в пламени горелки. Посевы инкубировали при температуре +20°С в течение 2-5 суток.

А. Б.


Рисунок 5. Рассев колоний бактериальной петлёй. А – бактериологическая петля, Б – схема рассева колоний бактериальной петлёй.


    1. Результаты и обсуждение




      1. Учёт общей численности бактерий и КОЕ в образцах

Число колоний образующих единиц (КОЕ) во всех образцах определялось методом посева индуцированных почвенных суспензий на плотные питательные среды (LA и TSA). Значение КОЕ отражает число бактерий, способных расти на использованной среде в 1г. почвы.


Образцы

LA

ТSА

1

2

3

среднее

КОЕ в 1 г

1

2

3

среднее

КОЕ в 1 г

МЛ-4

2720

2448

2584

2584

2,6*105

2960

2480

2680

2707

2,7*105

описание

Колонии разнообразные: прозрачные, белые, жёлтые, рыжие, не очень слизистые, практически не сливаются, мелкие.

МN-5

1040

2160

2624

1941

1,9*105

1768

1992

1352

1704

1,7*105

описание

Все колонии одинаковые, белые, слизистые, сливаются, что затрудняет счёт

МЛ-6

300

544

632

492

4,9*104

2536

1664

1500

1900

1,9*105

описание

Колонии разнообразные: белые, желтые, прозрачные, рыжие, не слизистые


Таблица 1. Определение КОЕ в образцах и описание выросших колоний
В таблице 1 представлены результаты опытов по определению КОЕ в образцах антарктических почв. При высеве на TSA число колоний образующих единиц во всех образцах было приблизительно одинаковым и составляло около 200 тысяч клеток на грамм почвы. При высеве на LA были обнаружены различия в значениях КОЕ в разных образцах. В образцах МЛ-4 и МN-5 было приблизительно одинаковое значение КОЕ: несколько сотен тысяч на грамм почвы, а в образце МЛ-6 число КОЕ было почти на порядок меньше и составляло приблизительно 50 тысяч на грамм образца. Поскольку TSA является более богатой средой, чем LA, то эта разница может быть обусловлена тем, что в образце МЛ-6 содержатся бактерии, нуждающиеся в более полноценном субстрате.

По фенотипу разнообразие выросших колоний самым богатым оказался образец МЛ-6: 4 типа колоний (рис. 6в). В образце МЛ-4 обнаружили два типа колоний, а в образце MN-5 – всего один (рис. 6а и 6б).



А

Б

В

Рисунок 6. Фотографии колоний, выросших из образцов

Определение общей численности образцов проводилось методом прямого счета бактериальных клеток, окрашенных акридином оранжевым с помощью флюоресцентного микроскопа.

В исследованных образцах эндолитной почвы общая численность на три порядка была выше КОЕ, определенного при посеве на TSA (таблица 2) и составляла приблизительно 1,5*108 во всех образцах.




Поле зрения

Образец

МЛ-4

MN-5

МЛ-6

1

4

1

2

2

5

4

3

3

3

5

2

4

1

1

1

5

2

2

5

6

2

4

3

7

3

3

6

8

2

3

1

9

5

1

5

10

4

1

3

11

7

3

6

12

5

0

2

13

3

4

4

14

3

2

2

15

1

3

1

16

5

6

2

17

6

4

3

18

3

5

4

19

4

1

5

20

1

1

4

21

3

2

1

22

2

3

2

23

0

7

1

24

4

0

2

25

1

1

1

26

2

8

1

27

4

4

3

28

0

7

2

29

3

4

1

30

2

3

4

Среднее значение

3

3,1

2,73

Количество клеток на 1 грамм образца

1,51*108

1,56*108

1,37*108


Таблица 2. Определение количества клеток в 1 грамме образца



Рисунок 7. Сравнение численности бактерий, определяемых методом посева на питательные среды и прямым микроскопическим методом
Согласно классификации, приведенной в книге Звягинцева с соавторами (1991), исследуемая почва относится к очень бедным (число КОЕ <1 млн клеток на г почвы; общее число клеток < 1 млрд клеток на 1 г почвы) (рис 7).

Следует отметить, что число бактерий в исследуемой почве, определенное методами как посева, так и прямого счета, в профиле изученной эндолитной почвы (105 кл на 1 г почвы) в целом сопоставимы с опубликованными ранее показателями для антарктических почв (Соина с соавт., 2012).




      1. Характеристика чистых культур

Выделение выросших бактерий проводилось методом истощающегося штриха. Описание фенотипов колоний выделенных штаммов представлено в таблице 3.
Таблица 3. Фенотип культур, выделенных из антарктических почв

Номер образца

Название штаммов

Фенотип колоний



MЛ4

МЛ4-1

Кремовые, средние, ровный край

МЛ4-2

Коричнево-розовые (как топленое молоко), крупные, ровный край

МЛ4-3

Белые, мелкие, ровный край

MN5

MN5-1

Грязно-белые, средние, неровный край, очень слизистые


МЛ6

МЛ6-1

Белые, крупные, ровный край

МЛ6-2

Белые, мелкие, ровный край

МЛ6-3

Белые, полупрозрачные, очень мелкие, ровный край

МЛ6-4

Белые, мелкие, ровный край, врастает в агар, выделяет коричневый пигмент

МЛ6-5

Желтые, средние, ровный край

Размер колоний: крупные - диаметр колоний 3-4мм, средние – 2-3 мм, мелкие – 1-2 мм, очень мелкие менее 1 мм.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ


Таким образом, проведенные нами исследования показали, что показатели числа культивируемых клеток гетеротрофных бактерий в профиле изученной эндолитной почвы (на уровне 105 кл на 1 г почвы) в целом сопоставимы с опубликованными ранее показателями для антарктических почв (Соина и др., 2012). Следует отметить, что в наших экспериментах наиболее благоприятной питательной средой для выделения культивируемых форм являлась триптиказо-соевая среда.

Отмечалась практическое одинаковое число КОЕ вниз по профилю антарктической почвы, в отличие от хорошо сформированных горизонтов почв умеренного климата. (таблица 1). Это может объясняться особенностями перераспределением клеток при замораживании- оттаивании почвы, а также переходом клеток в некультивируемое состояние в отдельных горизонтах формирующееся почвы.



Очевидно, что немного более высокая численность культивируемых клеток в исследованном нами верхнем горизонте почвы, в отличие от самого нижнего горизонта, обеспечивается активно заселяющимися во время благоприятного периода оттаивания бактериями, которые сохраняются в образуемых ими биопленках в экстремальных условиях отрицательных температур и высокого УФ облучения.
ВЫВОДЫ

  1. Количество жизнеспособных гетеротрофных бактерий в образцах не исследованной ранее почвы из района Холмов Тала Восточной Антарктиды сопоставимо с показателями, определяемыми в ранее исследованных образцах антарктических и арктических почв, а также антарктических мерзлых осадках.

  2. Обнаружено, что показатели числа потенциально жизнеспособных клеток, определяемых микроскопическим методом, на три порядка превышают число КОЕ, и всего на один порядок меньше данного показателя, обычно определяемого в почвах умеренных зон. Это свидетельствует о высокой степени заселенности бактериями изученных образцов антарктической почвы.

  3. Отмечена незначительная неравномерность в распределении числа КОЕ и общего числа клеток в профиле почвы, что может объясняться особенностями распределения клеток в процессе промораживания и оттаивания почвы.

  4. Выделенные из почвы культуры были разнообразны по морфологическим и культуральным признакам и могут быть включены в коллекцию культур для модельных астробиологических экспериментов.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1. Тихов Г.А. Астробиология – Молодая Гвардия, 1953

  2. Горячкин С. В., Гиличинский Д. А., Мергелов Н. С., Конюшков Д. Е., Лупачев А. В., Абрамов А. А., Долгих А. В., Зазовская Э. П. Почвы Антарктиды: первые итоги, проблемы и перспективы исследований. Геохимия ландшафтов и география почв (к 100-летию М.А.Глазовской), 2012.

  3. Мергелов Н. С. Почвы влажных долин в оазисах Ларсеманн и Вестфолль (Земля Принцессы Елизаветы, Восточная Антарктида) Почвоведение. - 2014.

  4. Кудинова А.Г., Лысак Л.В., Лапыгина Е.В., Соина В.С., Мергелов Н.С. Разнообразие и жизнеспособность прокариот в примитивных почвах оазиса Ларсеманн (Восточна Антарктида). Известия РАН, Серия Биологическая, 2015, №1

  5. Кудинова А.Г., Лысак Л.В., Соина В.С., Мергелов Н.С., Долгих А.В., Шоркунов И.Г. Бактериальные сообщества в почвах криптогамных пустошей Восточной Антарктиды (Оазисы Ласермана и Холмы Талла). Микробиология, 2015

  6. Асеева И. В., Бабьева И. П., Бызов Б. А., Гузев В. С., Добровольская Т. Г., Звягинцев Д. Г., Зенова Г. М., Кожевин П. А., Кураков А. В., Лысак Л. В., Марфенина О. Е., Мирчинг Т. Г., Полянская Л. М., Паников Н. С., Скворцова И. Н., Степанов А. Л., Умаров М. М. Методы почвенной микробиологии и биохимии – издательство московского университета, 1991








Достарыңызбен бөлісу:




©dereksiz.org 2022
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет