1. Приготовление микропрепаратов и окраска по Граму, Бури – Гинсу, Нейссеру, Цилю – Нильсену, простым способом. Микрокопирование в иммерсионной системе. Метод Грама



Дата15.12.2019
өлшемі133.11 Kb.
#447701
praktika mikra 1

1. Приготовление микропрепаратов и окраска по Граму, Бури – Гинсу, Нейссеру, Цилю – Нильсену, простым способом. Микрокопирование в иммерсионной системе.

Метод Грама. 1) на фильтр. бумагу наливают карболовый р-р генцианвиолет-1-2 м; сним бумагу, 2. раствор Люголя (1 м), обесцв спирт 96% (30сек). П. 4)Фуксин (1-2)

Окрака по Бури-Гинсу. Обнаружение капсул бактерий. В каплю туши вносят исследуемые бактерии и равномерно распределяют их петлей по предметном стеклу. Мазок высушивают, фиксируют . окрашивают карболовым фуксином 3-5мин. Промыв водой, высушивают. На темном фоне препарата капсулы видны в виде светлых ореолов вокруг красных бактерий.

Окраска по Нейссеру. При этом методе гранулы валютина- сине-черные, а бактерия- желтая. При этом мазок: 1) окрашивают 1 мин уксуснокислым метиленовым синим, сливают краситель, промывают водой, 2) наливают раствор Люголя на 30 сек.3) окрашивают 1-3 мин везувином , промывают водой и высушивают.

Окраска по Цилю-Нильсену. Применяется для выявления кислото- и спиртоустойчивых, споры. 1) полоской фильтрованной бумаги карб фуксина Циля с подогреванием над пламенем горелки до закипания и отхождения паров, подливая краситель. Далее бумагу снимают , обрабатывают 5% раствором серной кислоты и промывают водой. 3. На мазок наливают раствор метиленового синего, спустя 3-5 мин промывают водой и высушивают. Кислотоустойчивые бактерии окрашиваются в интенсивно красный цвет, остальные виды микробов , обесцвечивающиеся в процессе обработки препарата кислотой. В светло-синий цвет.

2 .Посев исследуемого материала на плотные и в жидкие питательные среды. Культуральные свойства микроорганизмов.

Пит.среды:

По происх: ест, иск, синт

По конс: тверд, жидк, полужидк

По сост: прост, сложн




Культур признаки:

По велич кол: круп, ср, мал

По форме: кругл, розеткообразн, многолопастн

Цвет завис от выработки пигмента

Консист сухие, влажные ,сочные

Пов-ть гладк, шерохов, исчерч

Хар-р роста: диффузн, придонный, пристен, обр пленки, осадка



3. Методы культивирования анаэробов.

I этап — обогащение на среде Китт — Тароцци, предварительно прокипячен­ной в течение 30 минут для удаления пузырьков воздуха. После посева среду прогревают 15 минут при 80°С для уничтожения вегетативных форм, споры анаэробов при этом сохраняются. II этап — получение изолированных колоний На средах Китт — Тароцци обнаружи­вается помутнение с пузырьками газа. Выделение чистой культуры проводится по одному из следующих методов:

А) по Цейсслеру — каплю материала со среды Китт — Тароцци засевают в чашку с кровяным агаром и распределяют материал шпателем, этим же шпате­лем производят посев во второй и третьей чашках;

Б) по Вейнбергу: каплю материала со среды Китт — Тароцци переносят в растопленный и слегка остуженный сахарный агар, затем под струю холл воды и инкубируют в термостате.

Ш этап — выделение чистой куль­туры на среде Китт — Тароцци.

4. Определение ОМЧ воздуха по методу Коха.

Седиминтационный метод. чашку Петри с питательным агаром оставляют открытыми в течение 5 мин, после чего посевы инкубируют в термостате при 37°С 2 сут. Результаты оценивают по суммарному числу колоний.на 100см2 за 5 мин – 10 л возд

Аспирационный метод - Посев воздуха осуществляется с помощью прибора Кротова

Аппарат Кротова устроен таким образом, что воздух с заданной скоростью просачивается через узкую щель плексигласовой пластины, закрывающей чашку Петри с питательным агаром. При этом частицы аэрозоля с содержащимися на них микроорганизмами равномерно фиксируются на всей поверхности среды благодаря постоянному вращению чашки под входной щелью.



5. Стерилизация и дезинфекция лабораторной посуды.

В микробиологической практике применяют различные дезинфицирующие вещества: 0,2% раствор жавель-солида, 3-5% растворы фенола, 5-10% растворы лизола, 1-5% растворы хлорамина, 3-6% растворы перекиси водорода, 1-5% растворы формалина, растворы сулемы в разведении 1:1000 (0,1%), 70% спирт и др.

Загрязненные патологическим материалом или культурами микроорганизмов пипетки, стеклянные шпатели, предметные и покровные стекла опускают на сутки в стеклянные банки с 0,2% раствор жавель-солида, 3% раствором фенола или перекиси водорода. Препаровальные иглы, бактериальные петли после употребления немедленно прокаливают на огне.

Поверхность рабочего стола протирают кусочком ваты, смоченным 3% раствором фенола. Руки дезинфицируют 1% раствором хлорамина.

Перед стерилизацией лабораторную посуду тщательно моют и сушат. Пробирки, флаконы, бутылки, матрацы, колбы закрывают ватно-марлевыми пробками. Поверх пробки на каждый сосуд (кроме пробирок) надевают бумажный колпачек. Чашки Петри стерилизуют завернутыми в бумагу по 1-5 штук или в пеналах.Пастеровские пипетки по 3-5-10-15 штук заворачивают в плотную оберточную бумагу. В верхнюю часть каждой пипетки вкладывают кусочек ваты.

Лабораторную посуду стерилизуют:

а) сухим жаром при температуре 150, 160 и 180?С соответственно 2 часа, 1 час и 30 минут.

б) в автоклаве при давлении 1 атм. В течение 20-30 минут


6. Определение чувствительности микроорганизма к антибиотикам методом Стандартных дисков.

культуру засевают газоном на питательный агар или среду АГВ в чашке Петри.

Среда АГВ: сухой питательный рыбный бульон, агар-агар, натрий фосфат двузамещенный.

На засеянную поверхность пинцетом помещают на одинаковом расстоянии друг от друга бумажные диски, содержащие определенные дозы разных антибиотиков. Посевы инкубируют при 37 °С до следующего дня. По диаметру зон задержки роста исследуемой культуры бактерий судят о ее чув­ствительности к антибиотикам.


7. Определение чувствительности микроорганизма к антибиотикам методом серийных разведений

Осн р-р АБ готовят с пом буф р-ра или спец р-ля. Серийные разведения препарата готовят в пробирках, содерж 1 мл мясо-пепт бульона. В 1-ю проб вносят 1 мл исходн р-ля ,после чего готовят серию разведений препарата. В кажд вносят 0,1 мл бакт сусп. Готовят контроли (мпб+сусп, мпб_АБ). Инкубир. Отсутствие помутнения – задержка роста в присутств данной конц аб


8. Ориентировочная реакция агглютинации (техника постановки, учёт результатов).

ОРА выполняют перед постановкой развернутой реакции для того, чтобы получить предварительное представление о выделенном виде или сероваре бактерий

Ставят при комнатной температуре на предметных стеклах. Для этого пастеровской пипеткой наносят на стекла раздельно друг от друга капли сыворотки в небольших разведениях(1:10-1:20) и две капли 0,5% раствора натрия хлорида(Контроль) . В каждую каплю(за исключением контрольной) вносят подозрительные колонии, снятые с поверхности плотной питательной среды.Перемешивают до помутнения. Результаты реакции учитывают через 5-10 минут. При положительной реакции в капле с сывороткой появляются крупные ли мелкие хлопья, при отрицательной- жидкость остается равномерной мутной.


  1. Биохимическая идентификация микроорганизмов. Изучение биохимической активности микроорганизмов: питательные среды; учёт результатов. Сделать посев в питательные среды.

Способность к ферментации углеводов оценивают по изменению окраски среды вследствие образования органических кислот (соответственно, происходит уменьшение рН), вызывающих изменение окраски индикатора.



«Пёстрый» ряд. Для определения сахаролитической активности применяют среды Хисса; в их состав входят 1% пептонная вода, индикатор Андраде и один из углеводов. При расщеплении углевода происходит изменение цвета среды. Поскольку бактерии различают по способности ферментировать те или иные углеводы, то ряды пробирок приобретают пёстрый вид.

Стеклянные поплавки. Для определения способности микроорганизмов ферментировать уг­леводы с образованием кислоты и газа в сосуды со средами вносят стеклянные поплавки (запаянные с одного конца короткие трубочки), всплывающие после наполнения их газом.

протеолитическую активность, выделяя протеазы, катализи­рующие расщепление белков. Наличие протеолитических ферментов из группы коллагеназ оп­ределяют при посеве уколом. При положительном результате наблюдают его разжиже­ние желатина в виде воронки

Образование аммиака. Для определения способности к образованию NH3 проводят посев в МПБ, и между его поверхностью и пробкой закрепляют полоску лакмусовой бумаги. При положительном результате бумажка синеет.

Образование индола и H2S. Обычно для определения способности к образованию индола и сероводорода также проводят посев в МПБ, между его поверхностью и пробкой закрепляют бумажки: в первом случае пропитанные раствором щавелевой кислоты {при образовании индола бумажка краснеет), во втором — раствором ацетата свинца (при образовании H2S бумажка чернеет).
10. Развёрнутая реакция агглютинации(техника постановки, учёт результатов).
Для определения AT в сыворотке крови больного ставят развёрнутую реакцию агглютинации ( РА). Для этого к серии разведений сыворотки крови добавляют диагностикум — взвесь убитых микроорганизмов или частицы с сорбированными Аг. Максимальное разведение, дающее агглютинацию Аг, называют титром сыворотки крови.

Агглютинацией называют склеивание бактерий при действии на них специфических АТ в присутствии электролита. Ее используют: 1) для определения вида и серовара выделенных бактерий, 2) для обнаружения АТ в сыворотке крови больного ( серодиагностика).

Для постановки РА необходимы три компонента: АГ(агглютиноген), АТ( агллютинин) и электролит( изотонический раствор натрий хлорида). В качестве АГ в РА применяют 18-24ч взвеси живых или убитых формалином, спиртом бактерий. Наиболее стабильным АГ являются взвеси убитых микроорганизмов.
На предметное стекло наносят каплями:

1-ая капля: - агглютинирующая сыворотка к возбудителям дизентерии;

2-ая капля: - агглютинирующая сыворотка к возбудителям брюшного тифа;

3-ья капля: - физиологический раствор (контроль).

Добавляют в каждую каплю исследуемую чистую культуру бактерий. Перемешивают.

Примечание: положительный результат - наличие хлопьев агглютината, отрицательный - отсутствие хлопьев агглютината .



11.Реакция преципитации в геле(техника постановки, механизм реакции, учёт результатов).

метод Оухтерноли). В качестве геля для реакции используют 1% хорошо отмытый прозрачный агар. Антигены и сыворотки вносятся в агаровый гель так, чтобы лунки, содержащие их, находились на определенном расстоянии. Диффундируя навстречу друг другу и соединяясь друг с другом, антитело и антиген образуют иммунологический комплекс в виде белой полосы. При наличии сложного по составу перципитоногена может возникать несколько полос.



12. Реакция Асколи ставится для диагностики сибирской язвы с целью обнаружения антигена сибиреязвенных бацилл. необходимо иметь: преципитиноген (экстракт из тканей), преципитин (сибиреязвенная сыворотка) и физиологический раствор.

Приготовление термопреципитиногена.


1. В колбочку, содержащую 1 г измельчённой кожи налить 10 мл физиологического раствора.
2. Колбу поместить в кипящую баню на 30-45 минут.
3. Профильтровать. совершенно прозрачен.
Для реакции преципитации фильтрат разводится в 100 раз и более.

Постановка реакции кольцепреципитации.


1) В пробирку наливается 0,3 мл преципитирующей сыворотки цельной или в разведении 1:5, 1:10.
2) По стенке пробирки осторожно наслаивается преципи-тиноген-
Реакция считается положительной, если на границе двух жидкостей образуется мутное кольцо выпадающего белка не позднее 5-15 минут.

При постановке реакции преципитации применяют следующие контроли:


а) антиген и физиологический раствор;
б) специфическая сыворотка и физ. раствор;
в) антиген и неспецифическая сыворотка.

13. Реакция гемолиза: техника постановки, механизм реакции, учёт результатов.

Является разновидностью реакции лизиса. В качестве АГ в этой реакции применяют эритроциты, которые лизируются гемолизинами в присутствии комплемента. Для постановки реакции гемолиза необходимы: 1) эритроциты барана; 2) гемолитическая сыворотка, содержащая гемолизины к бараньим эритроцитам и 3)комплемент.

Протекает в две фазы. В первой фазе происходит взаимодействие между эритроцитами и гемолитической сывороткой, во второй- сенсибилизированные эритроциты фиксируют комплемент и наступает лизис.

Для постановки реакции гемолиза в 1 пробирку вносят по 0,5мл гемолитической сыворотки, комплемента, разведенного 1:10 , 3% взвеси бараньих эритроцитов по осадку. 2 пробирка служит контролем комплемента, 3 пробирка –гемолитической сывороткой, 4 пробирка –эритроцитов. Учет после инкубации смеси в течении 1часа.




14. РСК(реакция связывания комплемента)

РСК проводится в два этапа при участии двух систем:


1) Первая система — АГ+АТ-(-комплемент
2) Вторая система (индикаторная) — гемолитическая сыворотка + эритроциты — показывает исход реакции в первой системе: в случае (образования комплекса АГ+АТ+комплемент), во второй системе не произойдет гемолиза ввиду отсутствия комплемента (эритроциты оседают на дно пробирки). В случае отрицательного результата в первой системе вторая сопровождается гемолизом, т.к. образуется комплекс эритроциты + гемолизины + комплемент.

Компоненты реакции:


1) испытуемая сыворотка (предварительно инактивируют нагреванием при 56 «С в течение 30 минут);
2) антиген (изготавливается из взвесей убитых микробов, лизатов микробов, полных АГ, гаптенов,
3) комплемент;4) гемолитическая сыворотка;5) 3 % взвесь эритроцитов барана,6) физиологический раствор;7) контрольная сыворотка.
Перед постановкой РСК следует проводить титрование комплемента в реакции гемолиза и определение рабочей дозы.

Титр комплемента — наибольшее разведение комплемента, которое вызывает полный лизис эритроцитов в присутствии гемолитической сыворотки.

Рабочая доза комплемента — количество комплемента, которое выше тира на 25 %.

Гемолитическая сыворотка готовится путём иммунизации кроликов 50 % взвесью эритроцитов барана. Полученную сыворотку инактивируют нагреванием при 56 °С.

Титр сыворотки — максимальное разведение сыворотки, которая вызывает полный лизис эритроцитов в присутствии комплемента. В качестве рабочей дозы берут гемолитическую сыворотку в тройном титре.

Исследуемая сыворотка накануне постановки реакции прогревается на водяной бане при 56 гр. В течении 30мин. Для инактивации ее собственного комплемента и разводиться начиная с 1:5.


15. Специфические АТ, обуславливающие лизис (растворение) клеток, носят название лизинов. Эти АТ применительно к бактериям называются бактериолизинами, к эритроцитам — гемолизинами. Лизины способны проявить свое лизирующее действие на АГ только в присутствии комплемента, который является составной частью любой свежей сыворотки.

в основе реакции лизиса лежит взаимодействие трех компонентов:


1) корпускулярного АГ (бактериальных клеток, эритроцитов и др. клеток);
2) специфических АТ иммунной сыворотки (бактериолизинов, гемолизинов и др.);
3) комплемента (сыворотка морской свинки).
В начале реакция идет по типу агглютинации, затем к комплексу АГ-АТ присоединяется комплемент. Наступает активация компонентов комплемента, которая приводит к лизису клеток (АГ).

применяется для:1) определения вида неизвестного микроба при помощи специфической сыворотки;


2) определения в исследуемой сыворотке наличия бактериолизинов к известному микробу.

Под воздействием бактериолизинов в присутствии комплемента микробы теряют подвижность, меняют форму (набухают), распадаются и, наконец, совсем растворяются.



in vitro в стерильной пробирке смешивают 0,1 мл взвеси станд сыв-ки, 0,4 мл инактивированной прогреванием при 56°С в течение 30 мин иссл. с-ки и 0,1 мл комплемента. В контрольную пробирку вместо иммунной с-ки добавляют такой же объем нормальной с-ки. Пробирки помещают в термостат на 2 ч при 37°С, а затем делают количественный высев на чашки Петри с плотной питательной средой. Посевы на 1 сут ставят в термостат. О содержании и концентрации лизинов в иссл. с-ке судят по различию в числе колоний в опыте и контроле. Б.p. in vivo иммунным морским свинкам внутрибрюшинно вводят 1 мл взвеси иссл. к-ры. Спустя 10, 30, 60 мин получают перитонеальный экссудат и исследуют его в придавленной капле и окрашенном фуксином. Контролем служит неиммунная морская свинка. В положительном случае в том и др. вариантах в придавленной капле видны разные стадии бактериолиза: обездвиживание, разбухание и исчезновение бактерий. В мазках из экссудата контрольной свинки, а также при отрицательной Б.р. в ранние сроки бактерии не изменены, в поздние сроки происходит увеличение их количества и животные могут погибнуть.

16, 17. Определение коли-титра и коли-индекса воды методом мембранных фильтров.


Кишечная палочка —постоянный обитатель толстого отдела кишечника человека и всех тепло­кровных животных. индикатор фекального загрязнения внешней среды и косвенный показа­тель наличия в воде болезнетворных микробов
Коли-индекс (индекс кишечной палочки) — это число ки­шечных палочек, обнаруженных в 1 л исследуемой воды.
Коли-титр определяют методами бродильных проб. основан на способности кишечной палочки развиваться при повышенных температурах и сбраживать сахара (маннит, глюко­зу и др.) с выделением газа.
1. ставят первую бродильную пробу: различные разведения исследуемой воды при помощи стериль­ных пипеток вносят в колбы и пробирки со специальными уг­леводными жидкими средами (Эйкмана)
Соотношение между средой и засеваемой водой должно быть 1:2. Посевы выращивают в термостате при 43-44°С в тече­ние 24 ч. При указанной температуре подавляется развитие микроорганизмов, не имеющих санитарно-показательного зна­чения для воды. Затем просматривают посевы (наличие пузырьков газа в поплавках, изменение цвета, помутнение).
2. при помощи бактериальной петли дела­ют высев в чашки Петри со средой Эндо и выращивают куль­туру при 37 °С 24 ч. образуют типичные темно-красные, ярко-красные или розовые колонии с темным центром, имеющие металлический блеск или без негоПри отсутствии характерного роста на пробу дают отрицательный ответ.
При наличии типичных колоний из них делают мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют. Если в мазках обнаруживают мелкие неспорообразующие грамотрицательные палочки, то переходят к 3 эт.

3. делают пересев в разведенную жидкую углеводную сре­ду (Эйкмана и др.). Посевы выращивают при 43— 44°С в течение 24 ч, после чего учитывают окончательно. При наличии в посевах помутнения, газообразования и изменения цвета дают положительный ответ, результаты которого выра­жают в виде коли-титра.
Коли-индекс определяют методом мембранных фильтров— пористые пленки из микроклет­чатки. подвергают стерилизации двойным кипячени­ем в дистиллированной воде в течение 15—20 мин. Затем сте­рильным пинцетом фильтры помещают на прибора Зейтца. проводят фильтрацию под ваку­умом определенного кол-ва исследуемой воды (через один мембранный фильтр — не более 100 мл воды).
фильтр кладут осадком вверх на поверхность среды Эндо, залитой в чашку Петри, плотно прижимая к сре­де. В одну чашку можно поместить 4—5 фильтров. После куль­тивирования в термостате при 370С в течение 18—24 ч подсчи­тывают выросшие на фильтре колонии, характерные для груп­пы кишечной палочки. берут материал для мазков, окрашивают их по Граму и микроскопируют.
Если в мазках присутствуют мелкие грамотрицательные неспорообразующие палочки, из оставшейся части колонии де­лают пересев в пробирки с небольшим объемом жидкой угле­водной среды. Посевы выращивают при 43—44°С в течение 24 ч. Наличие газообразования + р-я

18. Обнаружение гемолизина и лецитиназы у стафилококков.

метод Илеком и Леви.С этой целью готовятся чашки с питательным агаром, содержащим 5% отмытых физиологическим раствором эритроцитов барана, кролика и человека.



На пов-ть пит. среды по диаметру помещают стерильную полоску фильтровальной бумаги, смоченную а-антитокс сыв-кой. Отступив 1-2 мл от края полоски, перпендикулярно к ней засеивают штрихами исследуемые культуры. Посевы инкубируют при 37 °С в течение суток, после чего учитывают результаты.

Альфа-гемолиз проявляется в виде полного просветления среды вокруг штриха культуры и нейтрализуется а-антит сыв-й. Б-гемолиз на агаре с бараньей кровью дает частичное просветление, зона которого имеет буровато-пурпурный оттенок. Дельта-гемолизин определяется по узкой полоске гемолиза бараньих и кроличьих эритроцитов, не нейтрализуется альфа-антитоксической сывороткой.

Достарыңызбен бөлісу:




©dereksiz.org 2024
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет