Ауыл шаруашылық ғылымдары агрономия



жүктеу 3.01 Mb.
бет3/19
Дата18.07.2016
өлшемі3.01 Mb.
1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   19

Так, матки I группы при постановке на опыт имели живую массу 54,41 ± 0,38 кг и в конце его 56,47 ± 0,28 кг или дали прирост 2, 06 кг при td = 3,20.

У маток же III группы, содержащихся на осоко-разнотравном пастбище летом и на таком же сене зимой, наоборот, произошло уменьшение живой массы с 54,29 ± 0,41 кг до 53,15 ± 0,40 кг или на 1,14 кг при td = 1,99. Так, матки I первой группы превосходили особей третьей группы на 3,32 кг или 6,25% при довольно высоком критерии достоверности (td = 6,72), а матки II группы – соответственно на 2,69 кг или 5,06% при td = 5,32. Настриг шерсти в физической массе по группам составил от 4,28 до 4,37 кг на одну голову.

По длине шерсти также произошли заметные изменения. Так, в I группе, содержащейся на житняково-разнотравном пастбище, длина шерсти оказалась наиболее высокой и составили 12,47 см, что на 0,92 см больше, нежели в III группе при достоверности td = 7,49. Матки II группы, находившиеся на злаково-травных участках имели несколько меньшую длину (12,36 см), однако значительно превышающую в третьей группе – на 0,81 см при td = 6,40. По сравнению с начальным этапом работы длина шерсти у маток I группы увеличилась на 0,59 см (td = 3,69), II – на 0,57 см (td = 3,99), а в III группе, наоборот, уменьшилась на 0,22 см при td = 1,40.

В целом же подопытные овцы сохранили обычно присущее акжаикской мясо-шерстной породе соотношение по тонине шерсть (примерно 80% – 56 качества и по 10% – 50 и 48 качества), несмотря на некоторое утонение в III группе. При содержании маток на степных суходольных житняково-разнотравных и злаково-разнотравных пастбищах (I и II группы), настриги мытой шерсти увеличиваются по сравнению с низинными осоко-разнотравными (III группа) на 250 и 190 г при высокой степени достоверности (td = 5,10 и 4,04).

С целью более точной объективной оценки тонины шерсти были взяты образцы у тех же 30 подопытных маток (по 10 в каждой группе), от которых они исследовались еще в начале опыта год назад.

Установлено, в пределах каждого качества тонины, в результате содержания овец в различных условиях, произошли довольно существенные изменения. Так, если в начале опыта матки первой группы имели среднюю тонину шерсти 28,01 мкм, то в конце опыта – 28,87 мкм или на 0,86 мкм больше при высокой степени достоверности (td = 4,32). Заметное утолщение волокон произошло и во второй группе маток (28,69 против 28,14 мкм или на 0,55 мкм при td = 2,59). Это говорит о то, что при содержании маток на хороших суходольных степных житняково-разнотравных и злаково-разнотравных пастбищах при достаточном обеспечении питательными веществами, происходит более нормальный рост волокон в толщину, приближающейся к естественно возможным размерам, обусловленным генетическим потенциалом данной породы.

Следовательно, при содержании маток на осоко-разнотравных пастбищах, имеющих сравнительно невысокую питательную ценность травянистой растительности, происходит недополучение питательных веществ, а отсюда и их недостаточный расход на формирование шерстных волокон, что приводит к их заметному утонению.

Установлено, содержание мясошерстных кроссбредных овец на различных пастбищах летом и на сене с аналогичных сенокосов зимой оказывает существенное влияние на шерстную продуктивности качество шерсти. Так, при содержании маток на степных суходольных житняково-разнотравных и злаково-разнотравных пастбищах (первая и вторая группы) настриги мытой шерсти увеличиваются по сравнению с низинными осоко-разнотравными (третья группа) на 250 и 190 г при высокой степени достоверности (td = 5,10 и 4,04). Одновременно с этим значительно улучшается и качество шерсти. Крепость шерсти повышается на 0,92-1,04 км, при td = 3,77 и 3,24 и она достигает 11,03-11,15 км разрывной длины, что обычно присуще для кроссбредной шерсти. Улучшается жиропотность, повышается содержание шерстного жира и его качество, что способствует лучшему сохранению ценных природных свойств шерсти. При содержании на житняково-разнотравных и злаково-разнотравных пастбищах и таком же сене значительно повышается длина шерсти до 12,36-12,47 см, тогда как на низинных осоко-разнотравных она составляет 11,55 см при достоверной разнице (td = 7,54). Следовательно, содержание кроссбредных овец на степных суходольных житняково-разнотравных и злаково-разнотравных пастбищах летом и кормление сеном с аналогичных сенокосов зимой, дает возможность значительно повысить живую массу шерстную продуктивность и улучшить качество шерсти.

В целом, лучшие условия пастбищно-стойлового содержания положительно повлияли на воспроизводительную способность маток, а также на рост и развитие ягнят. Плодовитость подопытных маток составила в пределах 126,9 – 134,0%. Установлено, в возрасте 4-4,5 месяца баранчики І и ІІ групп по живой массе превосходили сверстников ІІІ - на 2,27-2,86 кг и ярочки – на 2,10-2,75 кг при td= 5,0-7,41.

Вычислением коэффициентов корреляции установлено, что матки, содержащиеся на житняково- и злаково-разнотравных пастбищах характеризуются более высоким уровнем сопряженности основных продуктивных признаков: между живой массой и настригом шерсти r = 0,563-0,586, длиной и тониной шерсти r = 0,721-0,739 при tr = 11,06-19,97, по сравнению с третьей группой, где r = 0,511 и 0,693 при tr = 8,38 и 14,71. Такую взаимосвязь признаков следует широко использовать как в селекции кроссбредных овец, так и в технологии производства продукции.








АУЫЛ ШАРУАШЫЛЫҚ ҒЫЛЫМДАРЫ

ВЕТЕРИНАРИЯ
УДК 636.295: 616-097
МEТОДЫ ОБНАРУЖЕНИЯ R-АНТИТЕЛ ПРИ ДИАГНОСТИКЕ БРУЦЕЛЛЕЗА ВЕРБЛЮДОВ
А. Абуталип, кандидат вет. наук, Г.Г. Абсатиров, кандидат вет. наук,

М.Г. Гусманов, кандидат вет. наук

Западно-Казахстанская научно-исследовательская ветеринарная станция

Западно-Казахстанский аграрно-технический университет имени Жангир хана
Мақалада бруцеллезге шалдыққан түйе организмінен R-антиденелерді анықтау тәсілдерін зерттеу жөніндегі мәліметтер келтірілген. Осы мақсат үшін ИФР-ың қолдану өте тиімді екендігі дәлелденді. R-антигенге оң нәтижесі реакция барысы жануарлардан бруцелланың R-түрінің бактериологиялық әдіс арқылы бөлініп алынуы ИФР-сының диагностикалық құндылығын көрсетеді.
В статье приводиться результаты исследовании по изучению методов обнаружения R-антител при бруцеллезе верблюдов. Доказало что, наиболее подходит для этой цели непрямой вариант РИФ на специфичный и чувствительный метод. Выделение R-культур при бактериологическом исследований патматериала от животных, положительно реагировавшие на R- антиген свидетельствуют об диагностической эффективности РИФ.

The article shows the results of investigations by studying methods of discovering R-antiliquid under brucelous of camels. It was proved, that more suitable one for this aim is variant RIF, as specific and sensible method. Secretion of R-culturs under bacteriological research patalogical material from animals, positive responding on R-antiliguids is bear witness about diagnostic effection of RIF.

Бруцеллы, как и другие виды микроорганизмов, под действием факторов внешней среды способны изменять фенотипические, культурально-морфологические и биологические свойства.

Измененные формы бруцелл не выявляются стандартными методами диагностики и в таком состоянии могут длительное время персистировать в организме животных и при определенных условиях реверсировать в типичную форму. В процессе реверсии диссоцианты восстанавливают основные признаки характерные для типичных бруцелл и могут явиться причиной вспышек бруцеллезной инфекции и рецидивов в оздоровленных хозяйствах [1].

В наших предыдущих исследованиях [2] показано, что до 13 % культур выделенные на территории Западно-Казахстанской области были идентифицированы как диссоцированные формы бруцелл. Поэтому, успех ликвидации бруцеллезной инфекции во многом зависит от точной диагностики, с учетом изменчивости бруцелл. В специальной литературе мы не встретили данных по изучению изменчивости бруцелл в организме верблюдов. Вместе с тем, в связи с возможной циркуляцией в естественных очагах бруцеллеза у верблюдов диссоцированных форм возбудителя, возникает необходимость обнаружения R-бруцеллезного антигена и антител индуцированные под его воздействием.

Одним из методов экспресс-диагностики бруцеллеза является реакция иммунофлуоресценции (РИФ). Имеются отдельные исследования направленные в основном для выявления R-антител у крупного рогатого скота при этом применяли непрямой метод РИФ с использованиям R-сывороток полученные в лабораториях, так как коммерческая R-сыворотка отсутствует [3].

В настоящей работе поставили задачи изучить возможности использования РДСК и РИФ при выявлении R-бруцеллезных антител у вакцинированных и больных бруцеллезом верблюдов. Серологические исследования в РА, РСК, РДСК проводили по общеизвестной методике. РИФ ставили по методике ИЭМ им. Гамалеи (1968) с некоторыми изменениями внесенные нами. В частности, для выявления R- антител использовали трех ступенчатой вариант РИФ с комплементом морской свинки. В качестве антигена использована культура из шт. 16/4 в концентрации 1 млрд. м. к. Поскольку антивидовой люминесцирующей сыворотки против глобулинов верблюда не существует, для окрашивания мазков на конечном этапе реакции использовали люминесцирующую сыворотку против глобулинов морской свинки выпущенной ИЭМ им. Гамалеи. Для определения специфичности РИФ при выявлении R-бруцеллезных антител исследовали сыворотки крови верблюдов свободных бруцеллеза (20 голов), вакцинированные против сибирской язвы (20 голов) и чумы (20 голов). Отрицательные результаты исследовании при этом свидетельствовали о специфичности метода.

Для выяснения возможной диссоциации вакцинных штаммов в организме верблюдов нами исследованы сыворотки крови иммунизированных против бруцеллеза верблюдов с использованием S и R антигенов. В качестве S-антигена использовали коммерческие диагностикумы выпускаемые биологической промышленностью, а в качестве R-антигена для РДСК использовали биофабричный овисный антиген, для РИФ антигенные пятна на предметных стеклах приготовленные из 1 млрд. взвеси шт. 16/4.

Результаты этих исследовании отражены в табл. 1.

Как видно из таблицы 1 реакции с S-антигенами у верблюдов вакцинированных шт.82 отрицательные на 120-й, а в группе иммунизированных неживой вакциной на 150-й день после вакцинации. А в 1 и 2 группах иммунизированные вакцинами 19 и 104-М, соответственно, реакции с антигенами были положительными даже на 180-й день (срок наблюдения). В динамике появления и угасания R-антител наблюдалась следующая закономерность: у верблюдов иммунизированные шт.82 на 30-й день R-антитела выявлена у 33,3 % на 60-й день 50 %, на 90-й день опять 33,3 % и на 120-й день они не обнаружены.

В группе верблюдов иммунизированных шт. 104-М на 30-й и 60 дни R-антитела были у 20 % животных, а на 90-й и 120-й дни их уровень доходила до 33,3 % и на 150-й день они не выявлены.

В группе верблюдов иммунизированных шт. 19 на 30-й день R-антитела обнаружены у 13,3 — 20,0 %, на 60,90 дни у 33,3 % верблюдов и в дальнейшем отмечали постепенный спад количество реагирующих, а на 180-й день результаты реакции были отрицательными.

В 4 группе иммунизированные неживой вакциной результаты исследования с R-антигеном во все сроки исследования были отрицательными.



Таким образом, результаты этих исследований показывают что при иммунизации верблюдов живыми вакцинами состоящие из S (шт. 19 и 104-М) и R форм (шт.82) по мере диссоциации в организме культур вакцинных штаммов появляются R-штаммы за счет которого образуются R-антитела которые могут одновременно циркулировать в сыворотке крови вакцинированных животных. Максимальное количество реагирующих на R-антиген животные отмечены на 60-90 дни после вакцинации, а в последующем наблюдалось постепенный спад количество реагирующих, что видимо связано с освобождением организма от возбудителя. R-антитела в сыворотке крови иммунизированных верблюдов исчезли намного раньше чем S антитела (группа 1 и 2). В то же время невакцинированные (контрольная группа) верблюды во все реакциях реагировали отрицательно. Необходимо отметить, что при выявлении R-антител по чувствительности РИФ намного превосходит РДСК.
Таблица 1 – Результаты серологических исследовании иммунизированных против бруцеллеза верблюдов с S и R антигенами


груп-пы

Характеристика животных в группе

Кол. исс-х жив.

Сроки исслед-я после вакцинации (дней)

Положительно реагировали в, %

с S -антигеном

R-антигеном

РА

РСК

РБП

РДСК

РИФ

1.

Вакцинированы полной дозой

в. abortus шт. 19 (80млдр. м.к.)

15

30

100

100

100

13,3

20,0




60

100

100

100

33,3

33,3




90

100

100

100

33,3

33,3




120

100

100

100

20,0

26,6




150

100

100

100

13,3

13,3




180

100

100

100

-

-

2.

Вакцинированы

в. abortus 104 М (80млдр. м.к.)

15

30

100

100

100

20,0

20,0




60

100

100

100

20,0

20,0




90

100

100

100

26,6

33,3




120

100

100

100

26,6

33,3




150

100

100

100

-

-




180

100

100

100

-

-

3.

Вакцинированы

в. abortus шт. 82 (100млдр. м.к.)

15

30

100

100

100

33,3

33,3




60

100

100

100

50,0

50,0




90

100

100

100

33,3

33,3




120

-

-

-

-

-




150

-

-

-

-

-




180

-

-

-

-

-

4.

Вакцинированы неживой вакциной КазНИВИ (4 см 3)

15

30

100

100

100

-

-




60

100

100

100

-

-




90

100

100

100

-

-




120

70

80

80

-

-




150

-

-

-

-

-




180

-

-

-

-

-

5.

Контрольные (невакцинирован-ные)

15

Во все сроки, со всеми антигенами получены отрицательные результаты исследования

В ходе выполнения этой работы 3 верблюда иммунизированные шт. 19 положительно реагировавшие с R-антигеном на 60 день после вакцинации были забиты на убой и патологический материал от них подвергнут бактериологическому исследованию. При этом от 2 верблюдов выделено 5 культур бруцелл, идентифицированные как R-формы бруцелл, что свидетельствуют об диагностической эффективности методов обнаружения R-антител.

Таким образом, проведенные исследования свидетельствуют о пригодности РДСК и РИФ для выявления R-антител при бруцеллезе верблюдов. Верблюдов вакцинированные неживой вакциной против бруцеллеза животных с использованием R-антигена можно исследовать в любые сроки после вакцинации.
ЛИТЕРАТУРА
1. Касилов, И. А. Бруцеллез сельскохозяйственных животных / И. А. Касилов. – Новосибирск. – 1992. – 260 с.

2. Абуталипов, А. А. Биологические свойства бруцелл выделенных на территории Уральской области / А. А. Абуталипов, М. Г. Гусманов, К. А. Нуршин // Вестник сельскохозяственной науки Казахстана. – 1985. – № 4. – с. 64-66.

3. Красиков, А. П. Использование РА и РНИФ с R-антигенами для диагностики животных, сенсибилизированных диссоцированными формами бруцелл / А. П. Красиков, Л. В. Дегтяренко. // Научно-технический бюллетень / ИЭВС и ДВ. – Новосибирск. – 1980. – вып. 19. – с. 8-12.

ӘОЖ 538.521. : 616.981


АВ БРУЦЕЛЛЕЗДІК R-ФАҒЫНЫҢ ДИАПАЗОНДЫ

ЛИТИКАЛЫҚ БЕЛСЕНДІЛІГІН ЗЕРТТЕУ
С. Е. Алпыспаева
Алматы ветеринариялық ғылыми-зерттеу институты
Пенициллиннің, бактерияларды лизогенді күйге келтіру қасиеті бар. Пенициллинмен әсер ете отырып, бруцеллалардан оқшаулап алынған фагтар бір-бірімен литикалық спектрі жағынан ерекшеленеді. Зерттеу нәтижесінде сұрыпталып алынған бруцеллездік АВ R-фагы, бруцеллардан әр түрлі нұсқаларындағы өзгерген түрлерін ерітеді және бұл фагты бруцеллардың өзгерген түрін идентификациялау және дифференциациялау барысында қолдануға болады.
Пенициллин обладает свойствами лизогенизации бактерий. Изолированные из бруцелл, лизогенизированных воздействием пенициллина, фаги отличаются друг от друга спектром литического действия. Полученный путем селекции и скрининга поливалентный бруцеллезный R-фаг АВ способен лизировать диссоциированные варианты бруцелл разных видов и его можно использовать для идентификации и дифференциации измененных форм бруцелл.
Penicilin is possesses by property solution of bacteriums. Isolate from brucell, solutioned by the influence penicillin., devourings differ from each other by dissoluing acts. Received from selection and serining polevalenting brucial R-fad AB is capable to dissolve dissociation variants of brucels of different kinds and it may be used for the identification and difference alterational forms of brucels.
Қолданылып жүрген әдістермен бруцелланың өзгерген нұсқаларын индентифика-циялау қиындық тұғызады [1].

Бұл айтылғандар бруцелланы индентификациялау және дифференциация үшін тағы қосымша әдістердің керектігін көрсетеді [2].

Микроорганизмдерді классификациялауда құрылымы өзіне тән торшалық әсер ететін бактериофагты қолданудың маңызы зор [3].

Микроорганизмдерді индентификациялау барысында, бактерияның фаготиптік әдісін басқа әдістермен салыстыра отырып қолдану, диагностикалық нақты, тез және де қандайда болмасын кез-келген зертханаларда, қолайлы болып табылатындығы көрсетті [4].

АБФ/БДҰ бекітілген еріту тестіне жататын бруцеллезді классификациялауда ТБ фагы бруцелланың S-түрін ғана ажыратады. Бұл тесті бруцелланың өзгерген вариантың дифференциялау және классификациясын анықтауда қолдана алмаймыз.

Қазіргі таңда белгілі бруцеллездік фагтар Wb, Fi, BK, IZ бруцелланың S-түрін ғана еріте алады [5].

B. abortus R-вариантынан Д.Л. Блинкова (1989) және А.Л. Воробьев (1988) арнайы белсенді R-фағын бөліп алған [6, 7].

Көпвалентті R-бруцеллезді фағының жоқтығы бізді ойландырып, бруцелланың әртүрлі штаммдарын сүрыптау және скринингтеу үшін, зерттеу жұмыстарын жүргізуге алып келді.

Зерттеу жұмыстарын жүргізу барысында, алдымен бруцелла штаммдарының лизогенділігін анықтадық. Бактерияларды лизонгендеу үшін өзіміз ойыластырып, ол үшін ҚР патенті алынған бактерияларды лизогендеу әдісін қолдандық. Ол үшін, біз пенициллиннің мөлшерін жоғарлата отырып (10-на 5000 ЕД / см 3), бруцеллардың әр түрлі өсінділерінің созылуы, сонымен қатар, қоректік ортадан өскен өсіндіні бактериологиялық ілмекпен алуда қиындықтар тұғызғанын көодік. Созылмалы өсіндіні кәдімгі бруцеллаға арналған пенициллинсіз қоректік сорпаға егіп, термостатта 3-4 күн 37° С температуралы термостатта ұстаймыз да, оны керамикалық сүзіндіден өткіздік. Сүзілген сүзіндінің бір тамшысын индикаторлы штаммы бар Петри шыны аяқшасына апарып, фагтың барын анықтаймыз.

Зерттеу кезінде төменде көрсетілген бруцелла штаммдарын колдандық: B. аbortus-544, 19, 82, 16/4, 81,1, 960; B. мelitensis-16 М, 11-12, 565,3,305,372; B. оvis-63/290, 10/2, 424/2; B. suis- 1330,1000; B. сanis-1066.

Бұлардың S-түріне:544,19, 16М, 565,1330; R-түріне: 16/4, 81,1,960, Н-12, 305, 3, 372, 63/290, 10/2, 424/2, 1066 және SR-түріне: 82,1000 бруцелла штаммдары жатады. 81,1,960,1000,10/2,424/2 штамдары жануарлардан, 305,372,3 – адамдардан бөлініп алынған; 544, 1330, 16 М-референтті; 19, 82,16/4 және Н-12 – вакциндік штаммдар. Келтірілген штаммдарды пенициллинмен әсер етіп, лизогенді күйін анықтадық және сонымен қатар, оларды индикаторлық өсінді ретінде де қолдандық.

Индуцирленген фагтың литикалық спектрін келесі көрсеткіш бойынша анықтаймыз: бруцелланың индикаторлық өсіндісі бар себіндіге сұйытылмаған фагтың бір тамшысын тамызамыз. Егілген Петри шыны ақшасын термостатқа ( 37° С) қойып, фагтың негативті түзіндісі пайда болғанша күнделікті қарап тұрдық. Бақылау ретінде ТБ және IZ фагтары қолданылды.

Зерттеуге алынған бруцеллездік штаммдар, пенициллинмен әсер ету барысында барлығыда лизогендік түрге айналды. Индикаторлық штаммдарға түрімен диссоциациялық дәрежесіне қарамай олардың түрін өзгертті.

Жүргізілген зерттеу нәтижесінде бруцелланың өзгерген нұсқасын еріте алатын бірнеше фагты байқайдық. Осы көрсетілген жолмен бруцелланы сұрыптау және скрининтеуде көпвалентті АВ бруцеллезді R-фагын бөліп алдық. Келтірілген фагқа ҚР патентік құжаттары алынып, сонымен қатар ЕМК «ҒЗВИ» оқу-әдістемелік кеңесінде қаралып, бекітілген. Бруцелланың өзгерген вариантын идентификациялау үшін көпвалентті АВ бруцеллезді R-фагын алу және қолдану әдістемелігі жазылды.

Бруцелланың S-және SR нұсқасына тіркелген литикалық белсенді ТБ және IZ фагтарынан айырмашылығы, АВ R-фагы S-түрдегі өсінділерді ерітпейді, тек бруцелла өсіндісінің өзгерген дәрежесін және R-түрін ғана ерітеді.

Қорыта келгенде, нақ осы фагты бруцелланың өзгерген түрін идентификациялау және дифференциациялау үшін қолдану өте тиімді болып табылады.


1   2   3   4   5   6   7   8   9   ...   19


©dereksiz.org 2016
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет