Расчетная соленость не учитывает избыточного количества других анионов, которые влияют на величину электропроводности. На примере оз. Маныч-Гудило четко видно, что зондирование как вариант определения солености по величине электропроводности хорошо описывает градиенты солености, но не дает информации об абсолютной концентрации солей. Аргентометрия тоже не дает желаемого результата, так как для данного водоема не существует формулы перевода концентрации хлорид-иона в общую соленость.
В ходе экспедиции было отобрано 16 проб фитопланктона. Отбор проб производился тремя способами: с поверхности, объемом 1,5 л и 0,25 л (9 проб); сетью Джеди, тралением 1 и
0,1 км (3 пробы); по горизонтам – батометром (4 пробы).
Часть проб была обработана на месте в живом виде, основная масса была подвергнута фиксации кислым раствором Люголя и 0,5%-ным формальдегидом.
Фитопланктон оз. Маныч-Гудило представлен зелеными (12 видов), синезелеными (8 видов), динофитовыми (7 видов), эвгленовыми, диатомовыми (по 5 видов) и криптофитовыми водорослями (2 вида) (Табл. 2). Во время проведения съемки наблюдалось "цветение воды". В планктоне доминировали хлорококковые (Oocystis socialis, численность 840 тыс. – 2 млн. клеток/л), вольвоксовые (мелкие представители Chlamydomonas при численности 50 тыс. – 2,8 млн. клеток/л), синезеленая водоросль Nodularia spumigena (плотность популяции 60-70 тыс. колоний/л), динофитовые Heterocapsa rotundata (150-650 тыс. клеток/л) и H. triquetra (200 тыс. клеток/л). Численность Heterocapsa triquetra возрастала в районе устья залива, H. rotundata и Сhlamydomonas – в глубоководной части озера, наиболее удаленной от залива.
Таблица 2
Видовой состав фитопланктона,
выявленный в результате гидробиологической съемки
в апреле 2001 г.
Название вида
| Bacillariophyta Actinocyclus ehrenbergii Ralfs | Amphora coffaeformis (Ag.) Kűtz. | Cylindrotheca closterium (Ehr.) Reiman et Lewin | Nitzschia tenuirostris Mer. |
Thabularia fasciculata (Ag.) Williams et Round
| Chlorophyta | Chlamydomonas coccoides Butch. |
Coenocystis subcilindrica Korsch.
|
Dicellula planctonica Swirenko
|
Dictyosphaerium pulchellum Wood
| Lagerghemia jeneviensis (Chod.) Chod. | Oocystis borgii Snow |
O. marssonii Lemm.
| O. socialis Ostf. |
O. echinulata Pr.-Lavr.
|
O. parva W. et G.S. West
| O. solitaria Wittr. |
Pandorina morum (O. F. Műll.) Bory
| Cryptophyta | Rhodomonas salina (Wislouch) Hill & Wetherbee |
Teleaulax acuta (Butcher) Hill
| Cyanophyta |
Anabaena bergii Ostf.
|
Gloeocapsa minima (Kiessel.) Hollerb.
|
Gloeocapsa minuta (Kűtz.) Hollerb.
|
Gloeocapsa turgida (Kűtz.) Hollerb.
|
Gomphosphaeria apponina Kűtz.
| Nodularia garveiana (Thw.) Thur. |
Nodularia spumigena Mert.
|
Spirulina laxissima G.S. West
| Dinophyta | Glenodinium pilula (Ostf.) Schiller |
Gymnodinium blax Harris
|
Gymnodinium sanguineum Hirasaka
|
Gyrodinium fusiforme Kof. et Swezi
|
Heterocapsa rotundata (Lochm.) Hansen
| Heterocapsa triquetra (Ehr) Stein |
Hypnodinium sphaericum Klebs
| Euglenophyta | Astasia sagitifera Skuja |
Euglena acus Ehr.
|
Euglena pisciformis Klebs
| Eutreptia thiophila Skuja | Trachelomonas verrucosa Stokes | Rhaphydophyta |
Heterosigma akashiwo (Hada) Hada
|
Достарыңызбен бөлісу: |