Задача № 1 Задача № 2

Задача № 1

Задача № 2

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 3

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 4

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 5

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 6

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 6

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 7

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 8

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 9

Ответьте на следующие вопросы:

Задача № 10

Ответьте на следующие вопросы;

9. Тестовые вопросы по теме:

1. Согласно ГОСТ, по степени воздействия на организм вредные вещества

подразделяются на … опасности.

А) 4 класса+

Б) 5 класса

В) 3 класса

Г) 6 класса

Д) 2 класса



Тема №6.

1. Тема: Методы оценки функционального состояния экспериментальных животных.

2. Цель: Научить оценке и анализу функционального состояния экспериментальных животных.

3. Задачи обучения:

а) Студент должен знать:

- основы токсикологии;

- химические вещества для контроля которых используют методы химического анализа;

- порядок осуществления контроля за содержанием вредных химических веществ;

- учение о функциональной системе животных, нарушение целостности которой приводит

к изменению поведенческого акта.

б) Студент должен уметь:

- проводить методы экспериментального исследования ;

- по полученным данным параметра токсичности рассчитать зоны острого и

специфического действия;

- оценить функциональное состояние ЦНС у животных.

4. Форма проведения: решение тестовых задач, устный опрос.

5. Задания по теме:

Задание №1. Разбираться в принципе работы и методах исследования функционального состояния организма экспериментальных животных.

Задание №2.Владеть навыками осуществления государственного предупредительного и текущего санитарно-эпидемиологического надзора в области гигиены труда.

Задание №3. Разработать комплекс профилактических мероприятий с учетом

особенностей различных производств и классов опасности химических веществ.

6. Раздаточный материал: Информационный блок по теме.
Руководство для практических занятий по гигиене труда: учебное пособие / В.Ф.Кириллов. – М.: ГЭОТАР- Медиа,2008. Стр. 286-300
1. ОБОСНОВАНИЕ ПДК ИЗБИРАТЕЛЬНО ДЕЙСТВУЮЩИХ

РАЗДРАЖАЮЩИХ ВЕЩЕСТВ В ВОЗДУХЕ РАБОЧЕЙ ЗОНЫ
Для обоснования ПДК и других профилактических мероприятий для избирательно действующих раздражающих веществ в эксперименте на животных необходимы следующие сведения:

- условия производства и применения вещества, количество рабочих, контактирующих с веществом;

- характеристика местного раздражающего и кожно-резорбтивного действия вещества;

- токсичность и характер действия вещества при однократном воздействии на организм;

- порог вредного действия при однократном поступлении вещества в организм по интегральным показателям;

- порог раздражающего действия вещества при однократном ингаляционном воздействии.

2. Характеристика действия вещества на кожу и кожно-резорбтивного действия.

Исследование влияния вещества на кожу выполняется в соответствии с п. 1 настоящих Методических указаний. Изучение кожно-резорбтивного действия вещества проводится в соответствии с Методическими указаниями "Оценка воздействия вредных химических соединений на кожные покровы и обоснование ПДУ загрязнений кожи" N 2102-79.

3. Определение среднесмертельной концентрации вещества при ингаляции.

Опыты проводятся на белых мышах или белых крысах. Экспозиция - однократно, 2 часа для белых мышей и 4 часа для белых крыс. Минимальная статистическая группа - 10 животных. Регистрация гибели животных проводится в течение 14 дней после экспозиции.

4. Определение Lim_ас для белых крыс.

Экспозиция - однократно, 4 часа. Минимальная статистическая группа - 10 животных. Обследование проводится непосредственно после окончания экспозиции. Показатели: интегральные тесты (мышечная сила, работоспособность, поведенческие реакции и др.).

При наличии сведений о возможном влиянии вещества на какой-либо орган или систему организма следует использовать адекватные показатели, отражающие их функциональное состояние.
Оценка эритемы и отека кожи животных проводится по шкале, приведенной в табл. 1.

Таблица 1

ОЦЕНКАФУНКЦИОНАЛЬНОГО СОСТОЯНИЯ КОЖИЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХЖИВОТНЫХ ПРИ ИЗУЧЕНИИ МЕСТНОГО ДЕЙСТВИЯ ВЕЩЕСТВ
а) Оценка степени эритемы.

Выраженность эритемы измеряется визуально или предпочтительнее с помощью колориметрической линейки С.В. Суворова и В.В. Чернышевой и оценивается в баллах.

+---------------------------------------------+------------------+

¦ Интенсивность эритемы (визуально) ¦Оценка эритемы по ¦

¦ ¦колориметрической ¦

¦ ¦линейке (в баллах)¦

+---------------------------------------------+------------------+

¦1. Отсутствие эритемы ¦ 0 ¦

¦2. Слабая (розовый фон) эритема ¦ 1 ¦

¦3. Умеренно выраженная эритема ¦ 2 ¦

¦(розово-красный фон) ¦ ¦

¦4. Выраженная эритема (красный фон) ¦ 3 ¦

¦5. Резко выраженная эритема (ярко-красный ¦ 4 ¦

¦фон) ¦ ¦

+---------------------------------------------+------------------+
б) Оценка отека кожи животных.

Величина отека определяется путем измерения толщины кожной

складки (в мм) при помощи толщиномера типа ТР-1-10.

+---------------------------------------------------+------------+

¦ Интенсивность отека ¦Оценка отека¦

¦ (увеличение толщины кожной складки, мм) ¦ (в баллах) ¦

+----------------+---------------+------------------+------------+

¦ ¦ кролики ¦ морские свинки ¦ ¦

+----------------+---------------+------------------+------------+

¦Отсутствие ¦ 0 ¦ 0 ¦ 0 ¦

¦Слабый ¦ до 0,5 ¦ до 0,3 ¦ 1 ¦

¦Умеренный ¦ 0,6 - 1,0 ¦ 0,4 - 0,6 ¦ 2 ¦

¦Выраженный ¦ 1,1 - 2,0 ¦ 0,7 - 1,0 ¦ 3 ¦

¦Резко выраженный¦ > 2,0 ¦ > 1,0 ¦ 4 ¦

+----------------+---------------+------------------+------------+

Оценка степени эритемы и отека суммируется для каждого подопытного животного, после чего вычисляется средняя оценка раздражающего эффекта для группы экспериментальных животных.

Степень выраженности раздражающего действия вещества на кожу определяется по классификации, приведенной в табл. 2.
Таблица 2
КЛАССИФИКАЦИЯ ХИМИЧЕСКИХ ВЕЩЕСТВ ПО ВЫРАЖЕННОСТИРАЗДРАЖАЮЩЕГО ДЕЙСТВИЯ НА КОЖУ КРОЛИКОВ МОРСКИХСВИНОК ПРИ ОДНОКРАТНОЙ АППЛИКАЦИИ
+------+---------------+-----------------------------------------+

¦Классы¦Суммарный балл ¦ Выраженность раздражающего действия ¦

¦ ¦ раздражения ¦ ¦

+------+---------------+-----------------------------------------+

¦ 0 ¦ 0 ¦Отсутствие раздражающего действия ¦

¦ 1 ¦ 0,2 – 2 ¦Слабораздражающее действие ¦

¦ 2 ¦ 2,1 - 4 ¦Умеренное раздражающее действие ¦

¦ 3 ¦ 4,1 - 6 ¦Выраженное раздражающее действие ¦

¦ 4 ¦ 6,1 - 8 ¦Резко выраженное раздражающее действие ¦

¦ 5 ¦ ¦Чрезвычайно сильное раздражающее действие¦

¦ ¦ ¦(некроз от неразведенного продукта) ¦

¦ 6 ¦ ¦50% раствор дает некроз ¦

¦ 7 ¦ ¦25% раствор дает некроз ¦

¦ 8 ¦ ¦10% раствор дает некроз ¦

¦ 9 ¦ ¦5% раствор дает некроз ¦

¦ 10 ¦ ¦Растворы слабее 5% дают некроз ¦

+------+---------------+-----------------------------------------+
2. ИЗУЧЕНИЕ МЕСТНОГО ДЕЙСТВИЯ ВЕЩЕСТВА

НА СЛИЗИСТУЮ ОБОЛОЧКУ ГЛАЗА

Изучаемый продукт закапывается в конъюнктивальный мешок глаза кролика (не менее 3 животных) в количестве 1 капли. Твердые вещества вносят в количестве 50 мг (дисперсность частиц до 10 мк). После внесения вещества на 1 мин. прижимают слезно-носовой канал у внутреннего угла глаза. Внесение вещества производят однократно.

Проводят наблюдения за прозрачностью роговицы и состоянием слизистой оболочки глаза ежедневно в течение 2 недель. Регистрируют появление и выраженность гиперемии и отека слизистой оболочки глаз, инъекцию сосудов склеры и роговицы.

Оценку повреждающего действия химических соединений на слизистую оболочку глаза кролика по степени гиперемии и отека, а также количеству выделений возможно проводить по балльной системе, предложенной A. Majda и K. Chuscielska (MedicinePracy, XXIV, 1973, 3, 321 - 336; Приложение 2).

Развитие изъязвлений слизистой оболочки глаз, помутнения роговицы, рубцовых изменений век свидетельствует о наличии у вещества резко выраженного раздражающего эффекта.
3. ИССЛЕДОВАНИЕ РАЗДРАЖАЮЩИХ СВОЙСТВ ВЕЩЕСТВА

ПРИ ИНГАЛЯЦИИ

О выраженности раздражающих свойств вещества при ингаляции

судят по величине Lim_ir для экспериментальных животных (белыхкрыс) и человека. Классификация раздражающих веществ по величинеLim_ir приведена в Приложении (Приложение 3).
3.1. Определение порога раздражающего действия вещества при

ингаляции для белых крыс.

При установлении Lim_ir промышленных веществ в эксперименте наживотных необходимо проводить комплексное исследованиефункционального состояния дыхательной системы и использоватьпоказатели, отражающие состояние ее различных отделов. Наиболееранними проявлениями раздражающего действия промышленных ядов приингаляции являются изменения частоты дыхания и чувствительностиобонятельного анализатора, усиление миграции клеточных элементовна поверхность слизистой оболочки верхних дыхательных путей илегких, развитие паранекротических изменений в ткани легких,угнетение активности сурфактанта легких.Экспозиция - однократно, 4 часа.Вид животных - белые крысы, масса тела 180 - 240 г.

Минимальная статистическая группа - 10 особей.Обследование животных проводится непосредственно послеокончания затравки.Определение Lim_ir целесообразно начинать с концентрацийвещества на уровне Lim_ac . В дальнейшем (в зависимости отполученного результата) изучаемые концентрации вещества понижаютили повышают в 2 - 3 раза. Во всех случаях необходимо установлениеконцентрации изучаемого вещества, не оказывающей раздражающегоэффекта на дыхательную систему экспериментальных животных. ЗаLim_ir принимается минимальная концентрация изучаемого химическогосоединения, вызывающая статистически значимые изменения функциидыхательной системы (по перечисленным выше показателям) посравнению с контролем.

3.1.1. Измерение частоты дыхания.

Для регистрации частоты дыхания у крыс целесообразно использовать способ, рекомендованный Р.М. Любимовой-Герасимовой (Гигиена труда и профзаболевания, 1968, N 4, 54 - 60). Принцип указанного способа состоит в регистрации ЭДС, возникающей в термобатарее, укрепленной у морды животного, при изменении температуры вдыхаемого и выдыхаемого воздуха.

Для регистрации частоты дыхания животных во время экспозиции можно использовать комплекс приборов, состоящий из датчиков (термобатарей), усилителя, интегратора и системы коммутации. Животных (белых крыс) помещают в домик с вмонтированным в него датчиком. Величина импульса увеличивается при помощи усилителя (в качестве усилителя может быть использован электрокардиограф, электроэнцефалограф и т.д.), после чего он подается на интегратор. В качестве интегратора можно использовать пульсотахометр (например, ПТ-2). В том случае, если интегратор имеет лишь один канал, чередование регистрации частоты дыхания следует производить с помощью включенного в схему переключателя на 12 - 20 каналов (по числу подопытных и контрольных животных). Изучение частоты дыхания производится при чередовании подопытных и контрольных животных. Определение существенности отличий частоты дыхания подопытных и контрольных животных осуществляется с помощью метода условных средних, за которые принимали средние траектории частоты дыхания на всем протяжении экспозиции.
3.1.2. Регистрация паранекротических изменений в легких.

О развитии паранекротических изменений в легких судят по способности ткани фиксировать краситель.

Исследование проводят по методу Я.Н. Ажина (1962) в модификации А.Л. Германовой.

Животным (крысам) сразу после затравки в боковую вену хвоста вводят нейтральный красный краситель в количестве 0,2 мл на 100 г массы тела.

Раствор 1% нейтрального красного красителя приготавливается на физиологическом растворе; перед употреблением краска подогревается до 100 град. C в течение 30 мин. Для того чтобы вена была хорошо видна, рекомендуется подогрев хвоста крысы в теплой воде (45 - 50 град. C). Время введения краски отмечается по секундомеру. Животных забивают пересечением позвоночника со спины (чтобы не перерезать трахею и исключить тем самым попадание крови в легкие) через 1 и 10 мин. после инъекции.

После забоя трупы животных вскрывают и извлекают легкие; 500 мг ткани легкого погружают в герметично закрытый, заранее заготовленный бюкс, содержащий 5 мл 1% солянокислого спирта. Кусочек легкого измельчают в бюксе кончиками острых ножниц (бюксы должны иметь одинаковый диаметр дна). Через 24 часа раствор сливают в центрифужные пробирки и центрифугируют для осаждения мелких кусочков свернувшейся крови и устранения мутности.

Определение количества красителя производят на ФЭКе при зеленом светофильтре (546 - 550 нм) в кювете толщиной 5 мм; отсчет по левому барабану.

Определяют экстинкции экстрактов, полученных из легкого крыс, забитых через 1 и 10 мин. после инъекции красителя. Показатель экстинкции экстракта из легких крыс, забитых через 1 мин. после инъекции красителя, оценивают как "накопление" красителя нейтрального красного в легких.

Вычисление показателя "выведения" производится путем нахождения разности между экстинкцией экстрактов, полученных от крыс, забитых через 1 и 10 минут после введения красителя. Полученную разность делят на 9 (разность во времени между двумя сериями опытов).
3.1.3. Определение "остроты обоняния".

В основу объективной ольфактометрии у животных положен ольфакто-респираторный рефлекс, который заключается в изменении дыхательного ритма вследствие обонятельного ощущения.

Определение чувствительности обоняния ("остроты обоняния") животных проводят к 4 веществам, используемым в клинической практике, - дегтю, тимолу, камфоре и розмарину. Дозированную подачу запаховых компонентов осуществляют по способу Elsberg и Levy в модификации М.Г. Медведовского.

Животных помещают в домики с термобатареей. Через отверстие в носовой части домика пахучие вещества подают в зону дыхания животного. О реакции животного судят по изменению частоты дыхания, которую регистрируют в течение 20 сек. до подачи вещества, во время и в течение 20 сек. после прекращения подачи ольфактивного компонента.Изменение частоты дыхания на 5 и более в минуту считают признаком реакции животного.

Интервал между испытанием последовательных доз запаховых компонентов составляет 2 минуты; между испытанием различных ольфактивных веществ - 10 минут.

Как установлено при обследовании 670 здоровых белых крыс обоего пола, изменение частоты дыхания вызывают следующие минимальные количества воздуха, содержащего перечисленные запаховые компоненты: для дегтя - 0,4 +/- 0,01 мл, для камфоры - 0,45 +/- 0,01 мл, для тимола - 0,46 +/- 0,01 мл, для розмарина - 0,4 +/- 0,01 мл.

3.1.4. Изучение клеточной реакции легких и верхних дыхательных путей.

Известно, что количественный и качественный состав свободных клеток на поверхности слизистых оболочек дыхательных путей характеризует выраженность ее патологических изменений.

Исследование клеточной реакции легких и верхних дыхательных путей следует проводить по методу LaBell и Brieger в модификации Г.С. Комовникова.

Крыс забивают через 1 час после окончания экспозиции изучаемого вещества путем внутрибрюшинного введения 1,0 мл 0,1% раствора нембутала. Вскрывают грудную клетку животных, перевязывают трахею, лигатуры подводят под пищевод и завязывают. Легкие вместе с трахеей извлекают за лигатуры из грудной полости. Промывают легкие от крови в физиологическом растворе. Трахею надрезают, вставляют канюлю, перевязывают и помещают в специальный вращающийся штатив так, чтобы легкие оказались внизу, а канюля сверху. К канюле присоединяют шприц с 10 мл физиологического раствора и вводят раствор в легкие. Затем штатив переворачивается и промывная жидкость поступает обратно в шприц. Количество полученногонерфузата фиксируют и добавляют краситель Романовского - Гимза. Несколько капель нерфузата помещают в камеру Розенталя и подсчитывают общее количество клеток, число макрофагов, нейтрофилов, лимфоцитов и эпителиальных клеток. Полученные величины пересчитывают на объем полученногонерфузата.

Для изучения клеточной реакции верхних дыхательных путей у тех же животных через трахею выше места перевязки вводится зонд в носоглотку и производится смыв 10 мл физиологического раствора. Далее исследование промывной жидкости производят так же, как смывов из легких.

Регистрируют количество нейтрофилов, лимфоцитов и эпителиальных клеток.

Приложение N 2
ОЦЕНКА ПОВРЕЖДАЮЩЕГО ДЕЙСТВИЯ

ХИМИЧЕСКИХ ВЕЩЕСТВ НА СЛИЗИСТЫЕ ОБОЛОЧКИ

ГЛАЗА КРОЛИКА ПО A. MAJDA И K. CHRUSAIELSKA
А. Гиперемия конъюнктивы и роговицы оценивается по следующим признакам:

1. Сосуды инъецированы - 1 балл.

2. Отдельные сосуды трудно различимы - 2 балла.

3. Диффузное глубокое покраснение - 3 балла.

Б. Отек век:

1. Слабый отек - 1 балл.

2. Выраженный отек с частичным выворачиванием век - 2 балла.

3. В результате отека глаз закрыт наполовину - 3 балла.

4. В результате отека закрыт больше, чем наполовину, - 4 балла.

В. Выделение:

1. Минимальное количество в углу глаза - 1 балл.

2. Количество выделений увлажняет веки - 2 балла.

3. Количество выделений увлажняет веки и окружающую кожу - 3 балла.

При резко выраженных повреждениях глаза суммарное количество баллов равно 10.
7. Литература:

Основная литература

На русском языке:

1. Гигиена труда. Учебник/ под.ред. Н.Ф. Измерова, В.Ф.Кириллова – М.,

ГЭОТАР-Медиа, 2008г. – 592с.

2. Руководство к практическим занятиям по гигиене труда (под ред. В.Ф.

Кириллова). – М., Медицина, 2008г.- 416с.

3. Гигиена /Под ред. акад. РАМН Г.И. Румянцева. - М.: ГЭОТАР-

МЕДИЦИНА, 2008г.- 608с.

5. 
   Общая гигиена /Под ред. акад. РАМН Г.И. Румянцева. - М.: ГЭОТАР-МЕДИЦИНА, 2008г.- 606с.
   

5. Алексеев С.В., Усенко В.Р. Гигиена труда. М.: Медицина, 1988г.- 576с.

6. Гигиена./Кенесариев У.И., Тогузбаева К.К. и др., Учебник Алматы. 2009г.-

668с.

7. Руководство по санитарной экспертизе в области гигиены труда. Под ред.

д.м.н., проф. Сраубаева Е.Н., Белоног А.А.- Караганда, 2008г.-562с.

Дополнительная:

1. Санитарные нормы и правила по гигиене труда промышленности. 3т.-

Омск. 1995г.- 1050с.

2. Медицина труда. Учебник / под ред. Измерова Н.Ф./2008.-520с.

3. Методика изучения производственного микроклимата м его влияния на

организм работающих. Под ред. к.м.н. Жакеновой С.Р. Учебно-

методическое пособие. 9965-406-50-2.- Караганда, 2005.-56с.

4. Галаева А.И. Производственные аэрозоли, их гигиеническая оценка и

нормирование. Методы исследования и профилактика пылевой

профпатологии. Учебное пособие.- Караганда, 2008.-80с.

5. Предупредительный и текущий санитарный надзор за вентиляцией. Под

ред. Сраубаева Е.Н., Жакенова С.Р., Шинтаева Н.У.- Караганда, 2010.- 66с.

6. Гигиена труда в ведущих отраслях промышленности РК. Учебно-

методическое пособие. Тогузбаева К.К. – Алматы, 2010.-73с.

7. Гигиена труда при работе с видеотерминалами. Учебно- методическое

пособие. Тогузбаева К.К. – Алматы, 2010.- 68с.

8. Предупредительный санитарный надзор при новом строительстве и

реконструкции промышленных предприятий. Учебно- методическое

пособие. Тогузбаева К.К. – Алматы, 2010.- 72с.

9. Предупредительный санитарный надзор. Учебно- методическое

пособие. Шайзадина Г.Н. – Астана, 2010.- 50с.
На казахском языке:

Негізгі:

1. Еңбек гигиенасы бойынша тәжірибелік сабақтардың жетекші құралы.

Тоғызбаева К.К. - Алматы. 2010.-366 б.

Қосымша:

1. Жарылқасын Ж.Ж., Өндірістік токсикология негізі. Оқу- әдістемелік

құрал. - Қарағанды. ҚММА баспаханасы. – 2007.- 80 б.

2. Сраубаев Е.Н., Жакенова С.Р., Шынтаева Н.У., Жарылқасын Ж.Ж. Жалпы

және жеке еңбек гигиенасы бойынша есептер жинағы. Оқу әдістемелік

құрал.- Қарағанды. ҚММА баспаханасы.-2007.-44 б.

8. Контроль - вопросы :

1. Основные принципы токсикологической оценки промышленных ядов.

2. ПДК вредных веществ в воздухе рабочей зоны.

3. Порог вредного действия.

4. Класс опасности вредных веществ в зависимости от величины

применяемых для их характеристики критериев.

5. Основные параметры токсикометрии, методы определения.

6. Концентрация средняя смертельная.

7. Порог острого интегрального действия.

8. Порг острого избирательного действия.

9. Порог общетоксического хронического действия.

10. Порог отдаленных эффектов.

11. Методы оценки функционального состояния экспериментальных

животных.

Тестовые вопросы по теме:

1. 
   … - одновременное или последовательное действие на организм нескольких ядов при одном и том же пути поступления.
   

А) Комбинированное+

Б) Комплексное

В) Сочетанное

Г) Ударное

Д) Острое
2. … действие, когда яды поступают в организм одновременно, но разными путями.

А) Комбинированное

Б) Комплексное+

В) Сочетанное

Г) Ударное

Д) Острое

3. … действие, яды действуют на организм человека в сочетании с факторами другой природы.

А) Комбинированное

Б) Комплексное

В) Сочетанное+

Г) Ударное

Д) Острое

4. … - отравление, возникшее от однократного воздействия яда или нескольких доз в течение рабочего дня.

А) Острое отравление+

Б) Хроническое отравление

В) Пищевое отравление

Г) Лекарственное отравление

Д) Алкогольное отравление

5. … - отравление, вызванное многократным в течение длительного времени действием малых доз вещества, каждая из которых вреда организму не наносит.

А) Острое отравление

Б) Хроническое отравление+

В) Пищевое отравление

Г) Лекарственное отравление

Д) Алкогольное отравление

6. Экспозиция для мышей составляет … .

А) 2 часа+

Б) 3 часа

В) 4 часа

Г) 5 часов

Д) 6 часов

7.Группа экспериментальных животных должна составлять не менее … .

А) 12 особей+

Б) 6 особей

В) 4 особей

Г) 20 особей

Д) 8 особей

8. … вызывает гибель 50% подопытных животных (мыши, крысы) при ингаляционном воздействии в течении 2 и 4 ч и последующем 14-дневном наблюдении.

А) Концентрация средняя смертельная (CL₅₀)+

Б) Доза средняя смертельная (DL₅₀)

В) Доза максимально переносимая (DL₀ CL₀)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

9. … вызывает гибель 50% подопытных животных при однократном введении в желудок, брюшную полость с последующим 14-дневным наблюдением.

А) Концентрация средняя смертельная (CL₅₀)

Б) Доза средняя смертельная (DL₅₀)+

В) Доза максимально переносимая (DL₀ CL₀)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

10. … наибольшее количество вредного вещества, введение которого в организм не вызывает гибели подопытных животных.

А) Концентрация средняя смертельная (CL₅₀)

Б) Доза средняя смертельная (DL₅₀)

В) Доза максимально переносимая (DL₀ CL₀)+

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

11. … наименьшее количество вредного вещества, вызывающее гибель 100% подопытных животных.

А) Концентрация средняя смертельная (CL₅₀)

Б) Доза средняя смертельная (DL₅₀)

В) Доза максимально переносимая (DL₀ CL₀)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)+

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

12. … минимальная доза, вызывающая изменения биологических показателей на уровне целостного организма, которые выходят за пределы приспособительных физиологических реакций.

А) Концентрация средняя смертельная (CL₅₀)

Б) Доза средняя смертельная (DL₅₀)

В) Доза максимально переносимая (DL₀ CL₀)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)+

13. … минимальная доза, вызывающая изменения биологических функций отдельных органов и систем организма, которые выходят за пределы приспособительных физиологических реакций.

А) Порог острого избирательного действия (Lim_ac.sp.)+

Б) Порог общетоксического хронического действия (Lim_ch.integr.)

В) Порог отдаленных эффектов (Lim_ch.sp.)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

14. … минимальная доза вещества, при воздействии которой в теч. 4 ч по 5 раз в неделю на протяжении не менее 4 мес. возникают изменения, выходящие за пределы физиологических приспособительных раекций.

А) Порог острого избирательного действия (Lim_ac.sp.)

Б) Порог общетоксического хронического действия (Lim_ch.integr.)+

В) Порог отдаленных эффектов (Lim_ch.sp.)

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

15. … минимальная доза вещества, вызывающая изменения биологических функций отдельных органов и систем организма.

А) Порог острого избирательного действия (Lim_ac.sp.)

Б) Порог общетоксического хронического действия (Lim_ch.integr.)

В) Порог отдаленных эффектов (Lim_ch.sp.)+

Г) Доза абсолютно смертельная (DL₁₀₀ CL₁₀₀)

Д) Порог острого интегрального действия (Lim_ac.integr.)

Правильные ответы на тестовые вопросы, СРСП №6