Управление биологической активностью почв

УДК: 6166:614:9:616

Организация и проведение комплекса специальных мероприятий направленных на предупреждение инфекционных болезней животных и получение полноценных и безопасных продуктов животноводства, были и остаются одной из главных задач ветеринарной службы. Предотвращение эпизоотии позволяет поддерживать и развивать необходимые межхозяйственные, межрегиональные и государственные связи, а успешная борьба с болезнями животных, опасных для человека, обеспечивает охрану здоровья населения страны [1].

Все вакцины, наряду со специфическим иммунным ответом, вызывают неспецифические изменения в иммунной системе, проявляющиеся в изменении численности различных субпопуляций лимфоцитов и их функциональной активности. Особенно выражены и стойки изменения в иммунорегуляторной системе. Характер и интенсивность сдвигов зависят от свойств вакцинного препарата его антигенной структуры, физических свойств, дозы, кратности аппликации, а также от состояния макроорганизма [2].

В настоящее время применяемые для специфической профилактики бруцеллеза крупного рогатого скота вакцины из штамма 19 и 82 несмотря на ряд положительных качеств имеют и отрицательные свойства. Так, при иммунизации вакциной из штамма бруцелл 19 животные долгое время остаются серопозитивными [3], что затрудняет проведение ветеринарно-санитарных мероприятий, дифференциацию реакций животных на вакцинный и полевые штаммы и определение эпизоотического состояния стад по бруцеллезу. Вакцина из штамма 82 является реактогенной при первичном применении на беременных коровах, нетелях и может вызвать аборты [4].

Вакцина 82-ПЧ в поисковых исследованиях оказалась перспективной и в отличие от вакцин из штаммов 19 и 82 при иммунизации беременных животных не вызывает аборты, так как бруцеллы вакцинного штамма 82-ПЧ не используют для своей жизнедеятельности (роста и размножения) 4-х атомный спирт – эритрол, который синтезируется в тканях матки, в плодных оболочках крупного и мелкого рогатого скота. Поэтому свойство этого нового прививочного препарата выгодно отличает его от других предшественников бруцеллезных вакцинных препаратов [5].

Иммуноморфологическую оценку эффективности и безвредности разных противобруцеллезных вакцин проводили путем патоморфологических, гематологических исследований.

Работу выполняли на материале, взятом от крупного рогатого скота, а также лабораторных животных, использованных в совместных научно-производственных опытах на кафедре «Эпизоотология, паразитология и ВСЭ» и ветеринарной клинике Западно-Казахстанского университета.

В опытах использовали клинически здоровых животных, из хозяйств благополучных по инфекционным болезням. Исследования проводили на коровах, а также на морских свинках.

Иммуноморфологические изменения проведены на морских свинках и на крупном рогатом скоте, на материале 2 серий опытов, включавших 3 групп животных.

Всех морских свинок первой – третьей подопытных групп иммунизировали вакциной из штамма бруцелл 82-ПЧ в дозе 2 млрд. м. т. (по – бактерийному стандарту мутности), за исключением лабораторных животных 2 и 3-й подгруппы первой группы, которых прививали противобруцеллезными препаратами из штаммов 82 в дозах по 1 млрд. м. т. подкожно в медиальную поверхность правого паха. Схема проведенных исследований приведена в таблице 1.

Наиболее выраженные иммуноморфологические изменения в органах и тканях морских свинок, вакцинированных штаммами бруцелл 82 и 82-ПЧ, обнаруживали в регионарных к месту введения вакцины правых паховых и контррегионарных левых паховых лимфоузлах и селезенке.

Через три дня после иммунизации независимо от штамма вакцин место инъекции было набухшим, на ощупь несколько болезненным. При послеубойном исследовании отмечалась студенисто-гемморрагическая инфильтрация подкожной клетчатки, выраженное полнокровие сосудов и мелкоточечные кровоизлияния. Распад нейтрофильных гранулоцитов и лимфоцитов наблюдался местами на значительном протяжении, а также по всей воспаленной ткани встречались макрофаги, загруженные гемосидерином, которые в местах геморрагий выступали в виде компактных скоплений.

Лимфатические фолликулы селезенки иммунизированных морских свинок имели хорошо выраженные герминативные центры, которые состояли в основном из бластных клеток. Лимфоциты и лимфобласты селезенки имели нормальную ультраструкту, но ядра их были с признаками функциональной активности. Отмечалась некоторая гипертрофия и фрагментация каналов эндоплазматической сети и комплекса Гольджи. Кроме того, у животных вакцинированных штаммами бруцелл 82 и 82-ПЧ в регионарных лимфоузлах мукоидное набухание стенок мелких сосудов было выражено сильнее и увеличено количество макрофагов, содержащих в цитоплазме пигменты.

По истечении семи суток после иммунизации в тканях на месте введения вакцины возникали значительных размеров очаги продуктивного воспаления с некротическими фокусами.

В почках капилляры сосудистых клубочков были неравномерно налиты, а некоторые почечные клубочки имели лапчатый вид. В сердечной мышце отмечалось полнокровие сосудов. В надпочечниках наблюдалось расширение коркового вещества органа за счет гиперплазии клеток пучковой зоны и умеренное кровенаполнение капилляров.

Через 10-14 дней после вакцинации лимфойдно-гиперпластический и макрофагальный процесс в лимфатических узлах усиливались. К этим срокам исследования фолликулы в правом паховом лимфоузле имели расширенные герминативные центры, мякотные тяжи были гиперплазированы и содержали большое количество клеток плазмоцитарного ряда. Стенка мелких кровеносных сосудов была в состоянии мукоидного набухания. В контррегионарном левом паховом и отдаленных лимфатических узлах гиперпластические пролиферативные процессы хотя и усиливались, но по интенсивности уступали регионарному правому паховому.

В селезенке отмечалось усиление лимфоидно-гиперпластического и макрофагального процессов. Наблюдалось расширение герминативных центров фолликулов, гиперплазия лимфоидной ткани периартериальных гильз, умеренное депонирование красной пульпы кровью, мукоидное набухание стенок мелких сосудов.

На двадцать первые сутки после введения вакцины лимфоидно-гиперпластическая и плазмоклеточная реакция в лимфоузлах подопытных животных были сходны с таковыми, отмеченными на четырнадцатые сутки опыта. Разница заключалась в том, что среди клеточных элементов мякотных тяжей лимфоузлов преобладающими были плазматические клетки. В селезенке морских свинок на этот срок исследования отмечались лимфоидно-гиперпластическая и плазмоклеточные реакции, они были сходны с таковыми, отмеченными на 14 сутки после инъекции вакцины.

В печени, почках и миокарде отмечалось полнокровие сосудов, зернистая дистрофия паренхиматозных клеток и очаговые скопления мононуклеарных клеток в интерстициальной ткани на 21-е сутки после иммунизации сохранились почти на прежнем уровне. Помимо этого, у морских свинок, иммунизированных штаммами 82, в правых паховых лимфоузлах наблюдали больше сосудов микроциркуляторного русла с фибриноидным некрозом и макрофагов, загруженных гемосидерином, а также в корковом веществе отмечали разрастание молодой соединительной ткани.

Через двадцать восемь дней после вакцинации иммуноморфологические изменения в лимфатических узлах все еще оставались хорошо выраженными. В правом паховом лимфоузле фолликулы имели расширенные герминативные центры, перифолликулярная зона их заметно обеднена клеточными элементами, мякотные тяжи гиперплазированы, а мозговые синусы расширены. В последних обнаруживались скопления эритроцитов, лейкоцитов и макрофагов. Среди плазмоцитов преобладали зрелые формы. В селезенке число фолликулов с расширенными герминативными центрами увеличилось. Больше стало артериол, венул и капилляров с мукоидным набуханием стенок. По ходу тяжей от коркового вещества к воротам узла в мозговых тяжах и в красной пульпе селезенке отмечали значительное количество плазмоцитов, особенно зрелых форм.

Мышечная ткань на месте введения как вакцины из штамма бруцелл 82-ПЧ, так и штаммов 82 на этот срок была без заметных морфологических изменений. В паренхиматозных органах на этот срок исследования иммуноморфологические изменения были несущественны, за исключением лишь слабо выраженной зернистой дистрофии паренхиматозных клеток.

В легких обнаруживали умеренное кровенаполнение сосудов, утолщение межальвеолярных перегородок за счет инфильтрации их лимфоидно-гистиоцитарными клетками, а также, скопления лимфоидных клеток в перибронхиальной и периваскулярной тканях с формированием лимфоидных фолликулов.

Следовательно, противобруцеллезные вакцины из штаммов 82 и 82-ПЧ вызывают в организме привитых морских свинок выраженные однотипные иммуноморфологические реакции, которые несколько варьируют в зависимости от степени реактогенности и остаточной вирулентности этих прививочных препаратов. Сравнительный анализ полученных результатов показал, что вакцина из штамма бруцелл 82-ПЧ является менее реактогенной по сравнению с другими вакцинными препаратами против бруцеллеза животных.

Иммуноморфологические изменения у всех вакцинированных живот­ных были однотипными, поэтому, во избежание повторений, считаем целесообразным привести подробнее патоморфологические изменения в органах и тканях телок, имунизированных препаратом из штамма бру­целл 82-ПЧ, подчеркивая при этом отмеченные различия по другим вакцинам. При макроскопическом осмотре внутренних органов и туш животных, привитых как штаммом бруцелл 82-ПЧ, так и штаммами 82, отме­чали увеличение объема регионарных к месту введения вакцин правых предлопаточных лимфоузлов, которые были бледно-серого цвета, упругой консистенции, с поверхности разреза сочные, однородные, со сгла­женным рисунком фолликулярного строения. Остальные лимфатические узлы увеличивались в объеме в меньшей степени, и лимфоидная ткань их имела выраженный рисунок фолликулярного строения. У всех подопытных телок, селезенка была несколько увеличена в объеме, имела притуп­ленные края и хорошо выраженный рисунок фолликулярного строения на разрезе. Видимых макроскопических в других внутренних органах из­менений не обнаружены.

Зернистую дистрофию паренхиматозных элементов обнаруживали в печени, почках и миокарде. Здесь отмечали полнокровие сосудов и мелкоочаговую пролиферацию лимфоидно-гистиоцитарных клеток. В поч­ках подопытных телок наблюдали умеренную пролиферацию эндотелия капилляров сосудистых клубочков, а в просвете между почечным клу­бочком и капсулой небольшое количество белкового субстрата. В некоторых сосудистых клубочках базальная мембрана капилляров была неравномерно утолщена.

Отмечали умеренную гипертрофию клеточных элементов клубочковой и сетчатой зон, а также гиперплазию клеток пучковой зоны надпочеч­ников. В интерстициальной ткани последних встречали очаговые скоп­ления лимфоидно-гистиоцитарных клеток.

В матке, яичниках и молочной железе всех подопытных телок спе­цифических для бруцеллезного процесса изменений не наблюдали.

Введение в организм вакцинных препаратов обуславливает развитие в органах специфических и неспецифических изменений, а также формирование гиперчувствительности немедленного и замедленного типов.

Результаты проведенных исследований показали, что вакцинные штаммы бруцелл 82 и 82-ПЧ достаточно хорошо приживаются в организме привитых морских свинок и вызывают в нем выраженные иммуноморфологические реакции. Впервые дни после иммунизации отмечали неспецифические изменения, которые проявлялись в виде активации клеток пучковой и сетчатой зон, а также повышенного распада зрелых лимфоцитов.

Наиболее выраженные иммуноморфологические, патогистологические и ультраструктурные изменения в органах и тканях морских свинок, привитых вакциной из морских свинок, привитых вакциной из штамма 82-ПЧ, отмечали на месте введения вакцины, лимфатических узлах и селезенке.

Таким образом из выше описанного можно заключить, что вакцина из штаммов 82 и 82-ПЧ вызывают выраженные иммуноморфологические процессы в организме привитых морских свинок и крупного рогатого скота, проявляющиеся усилением функции иммунокомпетентных клеток в виде макрофагально-плазмоклеточной и лимфоидно-гиперпластической реакциями, а также фагоцитоза бруцелл вакцинного штамма лимфоцитами и макрофагами лимфоузлов и селезенки, сопровождающийся перестройкой структурных элементов этих клеток, лизисом бактерий и переводом их в иммуногенную форму, способствуя тем самым формированию стойкого иммунитета.

2. Алексеев, К. К. Применение вакцины из штамма 82 против бруцеллеза крупного рогатого скота / К. К. Алексеев, А. К. Лукин. // Ветеринария. – 1980. – № 8. – С. 24.

3. Идрисов, Г. З. О специфических изменениях лимфоидной ткани, вызванных вакцинацией против бруцеллеза / Г. З. Идрисов. // Ученые записки КВИ. – Казань. – 1972. – Т. 113. – С. 98.

4. Лим, А. А. Иммунологическая активность крупного рогатого скота в зависимости от метода ведения вакцины из штамма Бр. абортус 104М / А. А. Лим. // Бюлл. ВИЭВ. – 1985. – № 59. – С. 7.

5. Триленко, П. А. Иммуногенные свойства противобруцеллезных инагглютиногенных вакцин в эксперименте на крупном рогатом скоте / П. А. Триленко, Г. А. Объедков, Л. Е. Испенков и др. // Труды НИВИ им. С. Н. Вышелесского. – Минск. – 1974. – Т.10. – С. 59-63.

ӘОЖ: 619: 616,9: 636,3

М. Я. Ярцев және тағы да басқа авторлардың мәліметінше, ірі қара пастереллезінің қоздырушысын Болингер, Кит бөліп алғаннан кейін 1878-1887 жылдары анықталды.

Пастереллез қоздырушыларын қойдан Спинола., Линьер; тауықтан Е. М. Земмер, Л. Пастер; қояннан Графки; шошқадан Леффлер мен Шютц; қодастан Орест., Арман бөліп алып, сипаттаған.

Сол жылдары Пастер алғаш рет бактерия өсіндерін әлсірету бойынша тәжірибе жүргізіп, құстарды иммундеді.

Осы еңбегінің құрметіне ауру қоздырушысы пастерелла, ал оны тудыратын ауру пастереллез деп аталды [1].

Үй және жабайы жануар, сонымен бірге құстардың көптеген түрлері арасындағы пастереллездің дамуында Р. multocida-ның үлкен рөлге ие екендігі анықталған.

Ғылымда ұзақ жылдар бойына пастерелланың жіктелуіне зоологиялық тұрғыдан баға беріліп, әр түрлі сүтқоректі және құс ауруын микробтардың дербес түрлері тудырады деп есептелген.

Тек 1939 жылы Розенбуш пен Мергант Pasteurella multocida-ның дербес түрін және ауру қоздырушысын сипаттады.

Ірі қара, әсіресе қой пастереллезін тудыруға қабілетті пастерелла туыстасы арасында тағы да бір дербес түр-Pasteurella haemolytica [2].

Берджидің бактерияларды анықтағышына сәйкес Pasteurellaceaе тұқымдасына-Pasteurella, Haemophilus және Actinobacillus деп аталатын үш туыстас жатқызылады.

Pasteurella туыстасының 15 түрі бар, соның екеуі: P. multocida және P. haemolytica жануар пастереллезінің қоздырушылары болып табылады.

Өз кезегінде P. multocida түрі биохимиялық қасиеттері бойынша ажыратылатын үш түр астына бөлінеді.

Оған: P. multocida subspecies multocida, P. multocida subspecies septica, P. multocida subspecies galicida. Қазіргі кезде көптеген ғалымдар Pasteurella туыстасының P. haemolytica түрін Mannheimia haemolytica деп атауды ұсынуда [3].

В. В. Селиверстов, 1996-2001 жылдар аралығында РФ ветеринарлық зертханасында 34010 пастерелла өсіндерін, оның 11688-ін ірі қарадан, 9758-ін шошқадан, 518-ін ұсақ қарадан, 1163-ін жылқыдан, 2257-сін құстан бөліп алған.

РФ ауыл шаруашылық малдары арасында ұшырасатын пастереллезге жүргізген талдауында, соңғы 12 жылда 76 облыс пен өлкелерде кездескен. Шошқа пастереллезі 70 аймақта байқалып, соның ішінде Башқұртстан Республикасында, Краснодар өлкесінде, Кемеров және Липецк облыстарында байқалған.

Ірі қараның пастереллезі Ресей Федерациясының 70 субьектісінде анықталып, Алтай өлкесінде, Башқұртстан Републикасында, Пенза, Смоленск және Ульяновск облыстарында, ұсақ қара пастереллезі елдің 15 аймағында байқалып, солардың арасында алғашқы орындарды Краснодар, Ставрополь өлкелері және Дағыстан Республикасы алады.

Жылқы арасындағы пастереллез 11 облыс пен өлкелерде тіркеліп, Башқұртстан Републикасынан жиі анықталған. Құс пастереллезі РФ-ның 49 субьектісінде анықталып, Башқұртстанда, Краснодар және Ставрополь өлкелерінде, Воронеж, Курск, Липецк, Пенза және Ростов облыстарында жиі кездескен. 43 аймақта (Краснодар және Ставрополь өлкелерінде жыл сайын) пастереллез жануардың әр түрінен анықталған.

Тәжікстан Республикасы Хатлон облысындағы жануарлардың ауруға шалдығуы Кулябск (зерттелген 52 жануардың 48-інен) және Муминабад аудандарында (зерттелген 1210 жануардың 1181-інен) анықталған.

Қой-ешкі пастереллезінің қоздырушысы Р. haemolytica А биотипі (3141 жануардан бөлінген) және P. multocida А биотипі (3615-і ауру жануардың 474-інен бөлінген).

Сыртқы ортаның биологиялық нысандарынан бөлінген Р. haemolytica А биотипінің 168 штамы және P. multocida А биотипінің 121 штамы қойлар үшін зардапты, ал осы нысандардан бөлінген P. multocida В биотипі қой мен ешкі үшін зардапты болып табылмады [4].

Швецияда 1989-1992 жылдары жүргізілген зерттеулерде, ауырған 146 адамнан 159-нан пастерелла штамы бөлініп алынып, оның 95-і P.multocida-ға жатқызылған [5].

Пастереллез медицина саласында да маңызды, бұл туралы мәліметтер әлемнің көптеген елдеріндегі ауруханаларда жүргізілген эпидемиологиялық талдау нәтижелерінде берілген [6].

Ауру әдетте тістеу, қауып алу және тырнау арқылы жұқтырылады. Шет елдік және отандық зерттеушілер адам пастереллезін үйде ит пен мысық ұстаумен, ауыл шаруашылық және жабайы жануарлардың, қансорғыш жәндіктердің (кене, слепни) тістеуімен байланыстырады.

Кейбір жағдайларда мүмкін болатын жұқтыру көзі – адам және жануарлардан бөлінген Pasteurella multocida культураларының қасиеттерін салыстыру эпидемиологиялық талдауды жеңілдетеді.

Өкінішке орай, микробтың қасиеттерінің қожайынның түріне тікелей тәуелді еместігіне байланысты бұл үнемі мүмкін бола бермейді. Бұндай байланыстың жоқтығы – пастереллалардың «зоологиялық» жіктеу қағидасына ғалымдар арасында кездесетін қарсылықтың негізгі себебі.

Пастереллез – зооантропоноздық ауру ретінде ветеринария және медицина үшін де өзекті мәселе. Осыған байланысты, аурудан алдын ала сақтандыру шаралары қатаң сақталынып, ал ауру пайда болған жағдайда оны тез арада жою жұмыстары қолға алынуы тиіс.

Шет елдік және отандық зерттеушілер, адам арасындағы пастереллезді үй жануарларын бағумен (ит, мысық), ауыл шаруашылық және жабайы жануарлар мен қан сорғыш жәндіктердің (кене, бүрге, сона т.б.) тістеуімен байланыстырады.

Табиғи жағдайда ауруды жануарлардың барлығы тыныс алу жолының кілегейлі қабығы, ал құстар асқазан-ішек жолы арқылы жұқтырады.

Пастерелла көбіне қой ағзасына респираторлық және алиментарлық жолмен, кейде зақымдалған тері жабыны арқылы енеді.

Қойда пастереллез өте жіті, жіті, жітілеу және созылмалы түрде өтеді. Аурудың өте жіті кезінде пайда болған қыздырма және әлсіздік салдарынан қозылар кенеттен өледі.

Жіті өтуі кезінде қозының дене температурасы 41-42 ⁰С артып, екінші-үшінші тәуліктері іш өтуі байқалып, бөлінген нәжістерінде қан және кілегей табылады.

Көзге көрінетін кілегей қабықтары (әсіресе көздері) гиперемияланған. Өкпенің зақымдалу белгілері байқалады. Танау қуыстары мен көздерінен ірің аралас сұйықтық бөлінеді [5, 7].