-кесте – Эхинококкозға шалдыққан қой етінің физикалық және химиялық көрсеткіштері (n = 20)

Сорпадағы белоктың алғашқы ыдырауынан пайда болған өнімдерді анықтау, мыс иондарының белоктың алғашқы ыдырауынан пайда болатын өнімдерімен әсерлесіп, кешенді мыс сульфатының (CuSO₄) тұнбаға түсуіне негізделген. Бұзылған ет сорпасында үлпектер пайда болады немесе көгілдір жасыл түсті тұнба шөгуі тиіс. Тексеру нәтижесінде сау қой етінің сынамаларында ешқандай тұнба байқалмады, ал эхинококкозға шалдыққан қой етінің сынамасында аздаған үлпектер түзілді.

Бұзылған етте, амин қышқылдарыннан аминнің бөлінуі және ұлпадағы майдың ыдырауына байланысты, ұшпа май қышқылдары пайда болады. Май алғашқыда гидролиз-денеді, кейіннен бөлінген май қышқылдарынан төмен молекулалы ұшпа май қышқылдары түзіледі. Жалпы ұшпа май қышқылдарының мөлшері еттегі белоктың және майдың жағдайын көрсетеді. Ұшпа май қышқылдарының мөлшері еттің бұзылу дәрежесіне сәйкес келеді.

Соған сәйкес ұшпа май қышқылдарының мөлшерін зерттеу нәтижесі бойынша, сау қойдың етіндегі ұшпа май қышқылдарының мөлшері 2,1 ± 0,03 мг болса, эхинококкозға шалдыққан қой етінде 4,3 ± 0,05 мг болды. Ауруға шалдыққан қой етінде ұшпа май қышқылдарының мөлшері 2,2 мг артқан.

Еттегі жиналған амин қышқылдары мен аммиактың мөлшері, оның бұзылуының көрсеткіші. Зерттеу көрсеткендей сау қой етінде аминді-аммиакты азоттың мөлшері 79 ± 0,33 мг%, эхинококкозға шалдыққан қой етінде 89 ± 0,25 мг% екендігі анықталды. Яғни, зақымданған қой етінде аминді-аммиакты азоттың мөлшері 10 % дейін артқан.

Еттегі аммиакты Несслер ерітіндісі көмегімен бақылау барысында, сүзінділер түсі өзгермей, қалпында сақталды (ашық-сары түсті), арасында ешқандай бөгде зат пайда болған жоқ. Эхинококкозға шалдыққан қой етінен алынған сүзінділер түсі сарғыш түске боялып, аздап бұлыңғырланды.

Қайнату сынамасының көмегімен қой еті сорпасының көрсеткіштерін анықтадық. Сау қой еті сорпасы мөлдір, иісі өте жағымды, хош иісті, өзгерістер байқалған жоқ. Ал эхинококкозға шалдыққан қой етінің сорпасында аздаған үлпектер бар және аздап иістенген.

Пероксидаза ферменті дені сау, шаршамаған қойларда үнемі болатыны белгілі. Ал қой індеті және инвазиялық ауруларға ұшырағанда, арықтағанда, күйзелгенде пероксидаза ферментінің мөлшері азайып, кейде мүлдем жоғалып кетеді. Тексерілген сау қой ет сынамалары көк жасыл түс беріп, кейіннен сұр түске айналды. Ауруға шалдыққан қой еті сынамасы пероксидаза сынамасына теріс нәтиже көрсетті. Яғни сығынды бірден қоңыр түске енді.

Бактериоскопия әдісімен еттің және ағзалардың жалпы бактериялық залалдануын анықтайды. Сау малдың етінде негізінен микробтар байқалмайды. Ал ауру малдан алынған етте шар тәріздес немесе әр түрлі таяқша тәрізді микробтар кездеседі.

Сау қой етін бактериоскопия әдісімен тексергенде еттің тереңдегі қабатынан микрофлора байқалмады, ал беткі қабатында бірлі жарым микроорганизмдер кездесті. Эхинококкозға шалдыққан қой етін бактериоскопиялау нәтижесінде бұлшық еттегі микробтар саны 22 ± 0,58 болды.

Қатты ауырған малдың тірі кезінде де етте белоктың ыдырауынан пайда болатын полипептидтер, пептидтер, амин қышқылдары т.б. көптеп жиналады. Формолды сынама осы заттарды формальдегид көмегімен тұндыруға негізделген. Жанталасып жатқан, қатты ауру малдан немесе өлексені сойғаннан алынған ет сығындысы бұл реакцияда тығыз қойыртпақ түзейді.

Біздің зерттеуімізде формолды сынама бойынша сау және ауруға шалдыққан қой етінің сынамасын тексергенде, сорпа тұнық, реакцияда теріс нәтиже байқалды.

Еттің сапасы, тағамға жарамдылығы және дәмдену деңгейі етке шоғырланған сутек иондарына байланысты. Еттегі рН ондағы көмірсу мөлшеріне және бұлшық еттегі ферменттердің белсенділігіне байланысты. Сау малды сойғаннан кейін, еттегі ферментациялық құбылыстардың нәтижесінде сутек иондарының көлемі қышқыл жағына ауысады. Ауру немесе жанталасып жатқан малдан алынған етте рН төмендеуі жай жүреді.

Зерттеу нәтижесінде сау қой етіндегі рН мөлшері 5,7 ± 0,03, ал эхинококкозға шалдыққан қой етінде 6,4 ± 0,01 болды. Зақымданған қой еттерінде сутек ионының шоғырлануы 0,7 санына артқандығын көрсетті.

2. Ивановец, П. В. К вопросу определения свежести мяса методом люминесцентного анализа // П. В. Ивановец, А. М. Сафронов. – Материалы науч. конф. МТИМП и ВНИИМП «Ветеринарная санитария и экспертиза в мясной и молочной промышленности». – М., 1962. – С. 58-62.

3. Носкова, Г. Л. Бактериальная флора охлажденного мяса. / Г. Л. Носкова. – М.: ЦИНТИ пищепром, 1966. – С. 4.

4. Колоболотский, Г. В. Ветеринарно-санитарная экспертиза с технологией продуктов животноводства. / Г. В. Колоболотский – М. : Колос. – 1967. – С. 543.

5. Житенко, П. В. Справочник по ветеринарно-санитарной экспертизе продуктов животноводства. / П. В. Житенко – М. : Колос. – 1980. – С. 140-151.

УДК: 619:616.995.428:

Вшивость скота распространена повсеместно, но чаще там, где не соблюдают зоогигиенические условия содержания и кормления животных. Заражение вшами происходит при контакте здоровых и инвазированных животных, а также через предметы ухода, подстилку [2]. Вшивость возникает во все времена года, но чаще это происходит в холодное время года.

В Западно-Казахстанской области скотоводство в настоящее время медленно, но верно стало возрождаться, не смотря на его временный спад и мелкотоварный характер в последнее время. К тому же инвазированность крупного рогатого скота в настоящее время возросла и стала более разнообразной. Если учесть в динамике, что во второй половине 20-го века экто- и эндопаразиты были разнообразными и встречались часто в сочетании нематоды + вшивость, затем этот паразитоценоз распался в связи с внедрением высокоэффективных антипаразитарных препаратов и концу 20-го века экто- и эндопаразиты скота встречались редко, но сейчас наблюдается опять рост этих заболеваний.

При лечении заболеваний, вызываемых экто- или эндопаразитами, животным применяют лекарственные средства в различных формах – в виде порошка, гранул, капсул, таблеток, пасты, суспензий, растворов, болюсов, которые вводят животным индивидуально с помощью различных приспособлений или скармливают групповым методом в смеси с кормом [3]. Реже используют препараты в форме аэрозолей или мази, которые наносят на кожу больным животным, еще реже вводят препараты внутривенно. В последние годы за рубежом и у нас стали применять инъекционные формы препаратов широкого спектра действия.

Наиболее распространен в Республике Казахстан групповой метод применения препаратов, хотя он и не дает достаточную эффективность. Все-таки индивидуальный метод введения лекарственных средств животным занимает достойное место как в нашей стране, так и за рубежом [4, 5].

Достоинством парентерального введения лекарств является то, что создается возможность применения лекарственных средств, раздражающих желудок или невсасывающихся в тонком отделе кишечника, быстрота действия и точность дозирования препарата.

Преимущество инъекционных форм, несмотря на большие затраты труда ветеринарных специалистов, складывается из того, что дегельминтизации подвергаются все животные в сравнении с групповым методом, повышается эффективность дегельминтизации, повышается культура ветеринарного обслуживания, сокращается количество дегельминтизаций за счет использования пролонгированной лекарственной формы, [5] обеспечивающей не только высокий терапевтический, но и профилактический эффект.

Готовые лекарственные формы должны отвечать следующим требованиям:

• 
  быть комплексными, содержать по возможности все активно действующие вещества, необходимые для успешного лечения и профилактики данного заболевания. Этим достигается как экономия труда, так и повышение эффективность препарата;
  
• 
  действовать по возможности пролонгировано, чтобы сократить число введение;
  
• 
  быть удобными для применения, не требовать лишней затраты рабочего времени ветеринарных специалистов на приготовление;
  
• 
  быть пригодными для изготовления промышленным путем и стабильными при хранении [6, 7].
  

• 
  противопаразитарный эффект, вызываемый биологически активным действующим началом, должен проявляться у животных всех видов [3];
  
• 
  определенное количество вещества должно вызывать одинаковый фармакологический ответ у одного и того же вида животных при одинаковых условиях исследования;
  
• 
  контрольный стандартный образец должен соответствовать исследуемому активному действующему веществу [8];
  
• 
  определяемая активность должна быть основой терапевтического действия препарата;
  
• 
  следует свести до минимума проблемы, которые могут быть обусловлены индивидуальной вариабельностью реакции животного на препарат [9];
  
• 
  следует иметь ввиду, что биологические исследования позволяют оценивать разные стороны действия одного и того же препарата и анализировать связь действия и химической структуры.
  

Направленный синтез новых лекарственных веществ, высоко эффективных, мало токсичных и экономичных, с широким спектром паразитарного действия возможен только на основе выяснения зависимости «механизм действия-структура». Однако, в настоящее время для этого еще недостаточно фактического материала.

На современном этапе развития ветеринарной науки существует принципиальная возможность научного планирования создания лекарственных форм. Для этого важно знать фармакокинетику действующего начала, желаемую длительность терапевтического действия и умело подобрать вспомогательные вещества [7].

Своевременное и правильное проведение профилактических и лечебных мероприятий по борьбе с экто- и эндопаразитами животных способствуют сохранению поголовья и повышению его продуктивности.

В последние годы на ветеринарном рынке появилось больщое количество зарубежных препаратов широкого спектра антипаразитарного действия на основе авермектинов и милбемицина, входящих в группу макроциклических лактонов. Несмотря на большое количество антипаразитарных лекарственных средств есть необходимость разрабатывать новые высокоэффективные препараты широкого спектра действия, малотоксичные, экономичные и доступные по цене, поскольку сельское хозяйство, особенно животноводство, претерпевает кризисное состояние из-за отсутствия финансирования.

Работа по созданию новых лекарственных форм на основе авермектинов, а также поиск новых, более перспективных действующих веществ, поиск вспомогательных компонентов, устраняющих побочный эффект препаратов продолжается как за рубежом, так и в нашей стране. Особый интерес представляют инъекционные препараты для внутримышечного введения. В России уже разработаны и продаются на ветеринарном рынке такие препараты как ивермек

Огромный интерес представляет работа по созданию отечественного лекарственного средства на основе авермектинов – абамекура для борьбы с экто – и эндопаразитарными болезнями крупного рогатого скота и других сельскохозяйственных и домашних животных.

На основе абамектина мы разработали лекарственное средство для внутримышечного введения крупному рогатому скоту, получившее торговое название абамекур (аbamecur), который представляет собой прозрачный стерильный раствор желтоватого цвета для внутримышечной инъекции. 1 мл лекарства содержит 10 мг абамектина и вспомогательные компоненты. Препарат обладает широким спектром действия и предназначен для лечения и профилактики крупного рогатого скота, овец, коз, верблюдов, оленей при гиподерматозе, эстрозе, цефалопинозе, эдемагенозе, цефеномиозе, элафостронгилезе, варестронгилезе, диктиокаулезе, протостронгилезе, мюллериозе, остертагиозе, гемонхозе, нематодирозе, маршаллагиозе, коопериозе, трихостронгилезе, эзофагостомозе, элафостронгилезе, строгилоидозе, телязиозе, трихоцефалезе, псороптозе, саркоптозе, хориоптозе, маллофагозах и сифункулятозах; свиней – при аскаридозе, эзофагостомозе, трихоцефалезе, стронгилоидозе, матастронгилезе, гематопинозе, саркоптозе.

Побочных явлений и осложнений при применении абамекура в соответствии с настоящей Инструкцией, как правило, не наблюдается. В редких случаях при повышенной индивидуальной чувствительности к абамекуру у некоторых животных наблюдается возбуждение, которое самопроизвольно проходит и не требует применения лекарственных средств.

Материалы и методы. Диагноз ставят по результатам клинического осмотра скота и обнаружению вшей и гнид на теле и волосяном покрове. Самки вшей откладывают гниды (яйца) и прикрепляют их специальным секретом к прикорневой части волос. Из гнид через 10-18 дней вылупляются личинки, которые питаются кровью и через 2-3 недели превращаются в имаго. Зимой и весной у крупного рогатого скота вши локализуются в области верхней части шеи, холки, основании рогов и внутренней поверхности бедер. В летний период вши на животных помещаются на участках тела, защищенных от прямых солнечных лучей, и там, где постоянно поддерживается влажность прикожного воздуха – на внутренней поверхности ушных раковин, в области ганашей и щеток.

Вши и гниды визуально хорошо различимы, особенно на крупном рогатом скоте темного цвета. Гниды с жизнеспособными зародышами светлые, полные и блестящие. При раздавливании их слышен характерный треск, чего нет у мертвых гнид (1, 2).

Для лечения вшивости использовали антипаразитарный препарат широкого спектра действия – абамекур, который вводили скоту в дозе 1 мл/50кг (0,2мг/ по ДВ) массы тела двукратно с интервалом 10-11 дней.

Результаты. Для лечения сифункулятозов крупного рогатого скота провели серию опытов, в которых применили абамекур.

В первом опыте в январе использовали 12 голов молодняка, пораженного L. vituli и H. eurysternus. На теле животных обнаруживали большое количество вшей от 7-11 на площади 10×10 см. Животные содержались в тесном темном помещении и были сильно истощенными. Из животных сформировали 2 неравнозначные группы. Первым 10 головам ввели внутримышечно абамекур в дозе 1 мл/50кг (0,2 мг/кг по ДВ) массы тела, а двум животным препарат не вводили, они служили контролем. За животными вели наблюдения в течение трех дней и установили, что к концу первых суток живых вшей на животных уже не было, а на гниды препарат не подействовал. У контрольных животных по-прежнему обнаруживали живых вшей, поэтому их также дегельминтизировали абамекуром. Через 10 дней у леченых животных живых вшей не было, значительно уменьшилось количество гнид с живыми зародышами. Поэтому скот повторно обработали абамекуром в дозе 1 мл/50кг массы тела. При наблюдении за животными в течение 1 года рецидивов вшивости не отметили. Животные были спокойными, с гладкой блестящей шерстью, прибавляли в массе.

Во втором опыте обработали 200 голов скота разного возраста, пораженных на 77 % вшами H. eurysternus и L. vituli. Количество вшей на крупном рогатом скоте варьировало от 0 до 12 экземпляров на площади 10×10см. Все животные находились в одном скотном дворе, поэтому их всех дегельминтизировали абамекуром, в дозе 1 мл/50кг, а через 11 дней, обработку повторили. Рецидивов поражения скота вшами в течение года не отмечали. Все поголовье скота прибавило в массе, имело гладкий шерстный покров.

Заключение. Анализируя проведенные опыты, мы пришли к заключению, что вши наносят большой вред животным, которые теряют много крови при сосании, при этом происходит интоксикация вводимыми со слюной токсическими веществами, раздражающими нервные рецепторы кожи. Поэтому необходимо содержать скот в чистых сухих помещениях, а кожный покров следует регулярно чистить и обмывать водой, не допускать контакт здоровых животных с животными, пораженными вшами. Испытания показали высокую эффективность абамекура против вшивости. Леченные животные быстро выздоравливали и рецидивы заболевания не повторялись в период наблюдения.

Таким образом, абамекур проявил высокую терапевтическую эффективность в дозе 1 мл/50 кг (0,2 мг/кг по ДВ) против сифункулятозов (вшивости) крупного рогатого скота.

2. Белоусов, М. Н. Использование празиквантеля в новых лекарственных формах пролонгированного действия при цестодозах собак / М. Н. Белоусов // Бюл. Всес. Ин-та гельминтологии. – 1985.– Вып. 40. – С. 17-19.

3. Ветра, Я. А. Некоторые проблемы ветеринарной фармакопрофилактики, фармакотерапии и биофармации / Я. А. Ветра // Ветеринарная фармакопрофилактика, фармакотерапия и биофармация. – Рига: Звайгзне. – 1974. – С. 5-15.

4. Литвинова, Т. П. Биофармацевтическое исследование некоторых лекарственных форм / Т. П. Литвинова, Н. С. Игнатьева, Г. П. Грядунова и др. // Фармация. – 1977. – №4. – С. 9-12.

5. Политов, Ю. А. Химиопрофилактика гельминтозов животных путем пролонгирования антгельминтиков / Ю. А. Политов, Б. Т. Ахметов. // Гельминтозы человека, животных и растений. – Алма-Ата. – 1987. – С. 167-173.

6. Сатоскар, Р. С. Фармакология и фармакотерапия / Р. С. Сатоскар, С. В. Бандаркар – М. : Медицина. – 1986. – 524 с.

7. Сенов, П. Л. Влияние биофармацевтических исследований на теорию и практику фармации / П. Л. Сенов, А. И. Тенцова, И. С. Ажгихин. // М. : Фармация. – 1981. – С. 3-10.

8. Сидоркин, В. А. Новая мицеллярная форма ивермектина – ивермек / В. А. Сидоркин, С. В. Семенов // Ветеринарные лекарственные средства. Саратов. – 2004. – С. 14-15.

9. Тенцова, А. И. Тенденции в создании современных лекарственных форм / А. И. Тенцова // Материалы 4-го Всерос. Съезда фармации. – Воронеж. – 1981. – С. 192-193.

10. Юркив, В. А. Абивертин – новое противопаразитарное лекарственное средство на основе абамектина / В. А. Юркив, С. В. Березкина, Т. Д. Черкасова, // Ветеринария сельскохозяйственных животных. – 2007. – № 9. – С. 42-43.

УДК: 619: 616. 314: 633.88
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РЕГИОНАЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ РАСТЕНИЙ