Э. Э. Браун, доктор с х. наук, Г. К. Нургалиева

2. Бакулов, И. А. Індеттану және микробиология негіздері / И. А. Бакулов, Е. И. Буткин, В. А. Ведерников, Г. Г. Юрков. – Алматы : Қайнар. – 1993. – 400 бет.

3. Сайдуллин, Т. Ветеринарлық індеттану / Т. Сайдуллин – 1 кітап. – Алматы. – 1999 ж

4. Домарадский, И. В. Возбудители пастереллезов и близких к ним заболеваний / И. В. Домарадский – М. : Медицина. – 1971. – 288 с.

5. Ярцев, М. Я. Пастереллезы животных и птиц: специфическая профилактика, лечение и методы борьбы / М. Я. Ярцев, В. И. Белоусов, О. В. Главацкая, Л. А. Елисеева, Г. П. Дубинина // Госагропром СССР ВАСХНИЛ. – 1989. – 57 с.

6. Таубаев, Ө. Б. Пастерелла мультоциданың 97-А штамының токсигендік қасиеті / Ө. Б. Таубаев, К. Е. Мырзабаев // Ғылым және білім – 2007 – №4 – 47-50 б.

7. Mosier, D. A. The evalution of vaccines for bovine pneumonic pasteurellosis / D. A. Mosier, A. W. Confer // Res.Vet.Sci. – 1989. – V.47. – №1. – P. 1-10.

8. Анников, В. В. Иммунопрофилактика инфекционных болезней животных / В. В. Анников., Л. Г. Белов., В. А. Каптюшин. – Учебно-методическое пособие по эпизоотологии для студентов ветеринарных вузов и ветеринарных врачей. – Саратов 2007.

Исследованиями общеклинических показателей определено, что у всех животных клинические параметры при поступлении в лечебницу несколько выше физиологических показателей. Это связано с реакцией организма на воспалительный процесс в ротовой полости, но в некоторых случаях (две кошки), клинические параметры были ниже показателей здоровых животных.

Больные животные были разделены на две группы по 4 головы в каждой (опытная и контрольная). Животных контрольной группы лечили традиционным способом, а опытной группы с применением шунгитовой воды в качестве антисептика. Для успокоения животных использовали нейролептик рометар в дозировке 0,2 мл на 1 кг живой массы, после фиксации животного механическим путем удаляли зубные камни, при этом в случаях поражения зубов или при выдвижении зубов из зубной альвеолы под воздействием камней проводили их удаление. Чаще всего поражались премоляры и моляры, на клыках как правило наблюдались незначительные отложения.

У всех животных провели общую антибиотикотерапию и витаминотерапию в течении 6-7 дней. В течении процесса лечения животным контрольной группы проводили орошения раствором перманганата калия и отваром коры дуба, а опытной группы орошения шунгитовой водой. Шунгитовая вода была приготовлена по следующей схеме: 10 г шунгита (порошок) заливается 100 мл обычной воды и выдерживается в течении суток при комнатной температуре. Результаты общеклинических исследований приведены на рисунке 3.

Таким образом, сравнительное лечение стоматитов у кошек показало, что метод лечения с применением шунгитовой воды является наиболее эффективным. При этом восстановление целостности слизистой оболочки ротовой полости протекало активнее, по сравнению с традиционным методом. А также при применении шунгитовой воды повышается аппетит, что в свою очередь положительно влияет на общее состояние кошек.

2. Петров, С. В. Общая хирургия / С. В. Петров – Санкт-Петербург : ПИТЕР. – 2002 – С. 184.

3. Плахотин, М. В. Общая ветеринарная хирургия / М. В. Плахотин, С. Т. Шитов, А. Д. Белов и др. – М. : Колос. – 1981. – С. 22.

УДК 619:616.995.428

В этом плане для ветеринарных специалистов большой научный и практический интерес представляет отечественный препарат абамекур, разработанный в Республике Казахстан. Абамекур представляяяяет собой инъекционный 1 %-ный раствор абамектина.

Абамекур обладает выраженным действием на личинок всех стадий подкожных, носоглоточных, желудочных оводов, вшей, кровососок, возбудителей саркоптоидозов, нематод животных. Препарат блокирует передачу нервных импульсов у паразитов, что вызывает их паралич и гибель.

Для теплокровных животных препарат малотоксичен, не оказывает эмбриотоксического, тератогенного и сенсибилизирующего действия, выводится из организма в течение двух недель, а уже начиная с 7 суток следы препарата улавливаются только высокочувствительными приборами.

Абамекур вводят животным, больным смешанными паразитозами, с соблюдением правил асептики и антисептики, внутримышечно в заднюю треть шеи в дозе 1 мл на 50 кг массы животного, что по действующему веществу соответствует 0,2 мг/кг однократно или двукратно с интервалом 10-11 дней. Если животные крупные, то дозу желательно разделить пополам и вводить в две точки с двух сторон. Эффективность абамекура против смешанных видов паразитов крупного рогатого скота изучали в серии опытов непосредственно в производственных условиях различных регионов Республики и получили хорошие результаты.

Время летит быстро и скоро будет необходимо проводить осеннюю дегельминтизацию животных перед постановкой на стойловое содержание. Поэтому напоминаем, что паразитарные болезни животных широко распространены и занимают значительное место среди других заболеваний, причиняя большой экономический ушерб хозяйствам за счет снижения продуктивности и качества продукции (прирост массы, надой молока, размер и качество шкур, выход приплода), утраты племенной ценности животных [2, 3].

Так, например, наиболее опасными заболеваниями крупного рогатого скота являются: гиподерматоз, саркоптоз, псороптоз, хориоптоз, демодекоз, сифункулятозы, диктиокаулез, стронгилятозы желудочно-кишечного тракта, стронгилоидоз, трихоцефалез телязиоз. Своевременное и правильное проведение профилактических и лечебных мероприятий способствует сохранению поголовья и повышению продуктивности животных.

До недавнего времени против каждого заболевания применяли индивидуальный препарат, поэтому, например, молодняк пораженный личинками оводов, чесоточными клещами, диктиокаулами и стронгилоидами лечили 5 и более раз. Теперь достаточно однократного введения абамекура.

Наибольший ущерб скоту причиняют личиночные стадии оводов – гиподерматоз. При гиподерматозе крупного рогатого скота абамекур вводили в дозах от 0,1 до 1,2 мл на 50 кг массы животного в осенний период при постановке животных на стойловое содержание после их выпасания на пастбищах, неблагополучных по лету оводов. В результате при осмотре дегельминтизированных животных в конце марта-начале апреля следующего года получили 100 % эффект от доз 0,5; 0,7 мл/50 кг и выше, дозы 0,1-0,4 мл/кг оказались малоэффективными.

У нелеченных животных количество оводовых желваков варьировало от 5 до 2, а у животных, леченных абамекуром в дозах 0,1-0,4 мл/кг, выявили от 1 до 7 оводовых желваков. Этих животных повторно, а контрольных вновь в начале апреля обработали абамекуром в дозе 1,0 мл/50 кг, что по действующему веществу составило 0,2 мг/кг массы животного. Результаты учли через месяц и получили 99,2 % эффект, т.е. абамекур подействовал на личинок I и II стадии, а на личинок гиподерм III стадии препарат не подействовал.

Считаем, что лечение гиподерматоза крупного рогатого скота лучше проводить в осенний период на ранней стадии развития личинок оводов. При этом, одновременно животные освобождаются от всех видов нематод легких и желудочно-кишечного тракта. В наших опытах зараженность животных нематодами варьировала от 59 до 90 %. При учете результатов дегельминтизации через 10 дней после дачи абамекура получили 100 %-ный эффект против диктиокаул, нематодир и других видов стронгилят желудочно-кишечного тракта, стронгилоид и 89 % против трихоцефал.

Против чесоточных клещей и вшей абамекур применяли скоту двукратно с интервалом 10-11 дней. Окончательную оценку результатов проводили через 30 и 60 дней после второй инъекции. Во всех случаях получили 100 % эффект.

Таким образом, абамекур является высокоэффективным отечественным препаратом широкого спектра антипаразитарного действия в очень низкой терапевтической дозе по ДВ 0,2 мг/50 кг массы животного. Являясь природным соединением, он не оказывает отрицательного влияния на клинико-физиологический и иммунный статус животных и окружающую среду.

Анализируя полученные данные, можно сказать, что ветеринарная практика Казахстана получила перспективный отечественный препарат широкого спектра антипаразитарного действия в очень низкой дозе и по низкой цене. Абамекур – экологически безвредный препарат должен занять ведущее место среди наводнивших рынок иностранных препаратов при лечении паразитарных болезней крупного рогатого скота и других видов жвачных, а также вытеснить фосфоорганические соединения, применяемые против арахноэнтомозов, уже сослуживших свою добрую службу ветеринарии.

2. Сазанов, А. М. Методические рекомендации по определению экономической эффективности противогельминтозных мероприяий и результатов науно-исследовательских работ, изобретений и рационализаторских предложений / А. М. Сазанов, С. И. Мамержанов, Р. Т. Сафиуллин, П. А. Чулков – ВИГИС : М. – 1986. – 42 с.

3. Сафиуллин, Р. Т. Организация и экономика ветеринарного дела. Методические рекомендации / Р. Т. Сафиуллин, Т. И. Минеева, Е. В. Мелоян, М. А. Мусатов – М. : Наука. – 2001. – 50 с.

УДК 619:616.9:57.063.8

Біздің зерттеу жұмысымыздың мақсатының бірі пастерелла мультоциданың 97-А (А серологиялық түрі), 96-В (В серологиялық түрі) және 97-Д (Д серологиялық түрі) штамдарынан дайындалған вакцинаның тәжірибелік үлгілерінің иммуногендігін ақ тышқандар мен үй қояндарында анықтау болды.

Тәжірибеде салмақтары 18-20 г ақ тышқандар және 2,5-3,0 кг болатын шиншилла тұқымының үй қояндары пайдаланылды. Зертханалық жануарларды үш топқа бөлдік: біреуі-бақылау, екеуі-тәжірибелік.

Бірінші топтағы ақ тышқандар мен үй қояндарына ірі қара, қодас және қойлардың пастереллезіне қарсы эмульсияланған формолвакцинаны ендірілді.

Екінші тәжірибелік топтағы ақ тышқандар мен үй қояндары 97-А, 96-В және 97-Д (Д серологиялық түрі) штамдарынан дайындалған ірі қара пастереллезіне қарсы инактивтелген вакцинамен егілді.

Үшінші, (бақылау) топтағы ақ тышқандар мен үй қояндарына вакцина ендірілген жоқ.

Ақ тышқандарға және үй қояндарына қойылған тәжірибе нәтижелері 1-ші және 2-ші кестелерде берілді.